Siberian Journal of Life Sciences and AgricultureSiberian Journal of Life Sciences and AgricultureSiberian Journal of Life Sciences and Agriculture2658-66492658-6657Science and Innovation Center Publishing House44257210.12731/2658-6649-2026-18-1-1389FFEFVYФизиология человека и животныхHuman and Animal PhysiologyResearch ArticleSerum metabolomic profile in Arbor Acres broiler chickens: associations with gut microbiome composition and productivity performanceМетаболомный профиль сыворотки крови цыплят-бройлеров кросса Arbor Acres: ассоциации с составом кишечного микробиома и показателями продуктивностиhttps://orcid.org/0000-0002-9578-794757218145388K-5335-20128243-2537ДерябинДмитрий ГеннадьевичDeryabinDmitry G.
Россия

д-р мед. наук, профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории селекционно-генетических исследований в животноводстве

Doctor of Medical Sciences, Professor, Leading Research Assistant, Laboratory of Breeding and Genetic Research in Animal Husbandry

dgderyabin@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-3790-278355344908600E-8547-20172484-2215ВласенкоЛюдмила ВикторовнаVlasenkoLudmila V.
Россия

канд. биол. наук, научный сотрудник лаборатории селекционно-генетических исследований в животноводстве

Candidate of Biological Sciences, Research Assistant, Laboratory of Breeding and Genetic Research in Animal Husbandry

lv.efremova@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0001-6853-424226650061100F-2041-20152898-9150KarimovIlshat F.КаримовИльшат Файзелгаянович
Россия

канд. биол. наук, научный сотрудник лаборатории селекционно-генетических исследований в животноводстве; доцент кафедры эпидемиологии и инфекционных болезней

Candidate of Biological Sciences, Research Assistant, Laboratory of Breeding and Genetic Research in Animal Husbandry; Associate Professor, Department of Epidemiology and Infectious Diseases

ifkarimov@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-9015-836756192764700N-4454-20147297-3319ДускаевГалимжан КалихановичDuskaevGalimzhan K.
Россия

д-р биол. наук, профессор РАН, ведущий научный сотрудник отдела кормления сельскохозяйственных животных и технологии кормов им. С.Г. Леушина

Doctor of Biological Sciences, Professor RAS, Leading Research Assistant, Department of Feeding for Farm Animals and Feed Technology named after S.G. Leushin

gduskaev@mail.ruФедеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий» Российской академии наукFederal Research Centre of Biological Systems and Agrotechnologies of the Russian Academy of SciencesФедеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Оренбургский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииOrenburg State Medical University of the Ministry of Health of Russiaru280220262026181113930072026Copyright ©; , Deryabin D.G., Vlasenko L.V., Karimov I.F., Duskaev G.K.Copyright ©; , Дерябин Д.Г., Власенко Л.В., Каримов И.Ф., Дускаев Г.К.Deryabin D.G., Vlasenko L.V., Karimov I.F., Duskaev G.K.Дерябин Д.Г., Власенко Л.В., Каримов И.Ф., Дускаев Г.К.https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0https://journals.rcsi.science/2658-6649/article/view/442572

Background. Comprehensive analysis of the serum metabolite profile (metabolome) is becoming a popular tool for assessing the physiological state of agricultural poultry.

The purpose of this study was to assess the most significant blood metabolites in Arbor Acress broiler chickens and determine their associations with gut microbiome composition and performance indicators.

Materials and methods. The analysis included 28 broilers chicken’s groups fed a basal diet and also receiving various feed additives (probiotics, antibiotics, small plant-derived compounds). The metabolite profile of blood serum was determined using commercially available “DiaVetTest” veterinary kits (DIAKON-DS, Russia). The gut microbiome composition was assessed based on high-throughput sequencing method using the MiSeq platform (Illumina Inc., USA).

Results. Correlation analysis revealed four statistically significant associations between serum markers and chicken productivity indicators: a positive one in the pair “creatinine – meat productivity” and a negative one in the pairs “urea – weight of inedible carcass part”, “glucose – liver weight” and “cholesterol – slaughter yield”. In turn, comparison of the metabolite profile and the gut microbiome composition showed multiple associations linking the bacterial community with serum concentrations of malondialdehyde, bilirubin, uric acid, and urea.

Conclusion. The study results expand the understanding of metabolic indicators for monitoring poultry productivity and also for the first time characterize urea as a performance marker that can be controlled via influences on the chicken gut microbiome.

Обоснование. Комплексный анализ метаболических параметров сыворотки крови (метаболома) становится востребованным инструментом оценки физиологического состояния организма сельскохозяйственной птицы.

Целью исследования является характеристика наиболее значимых метаболитов крови цыплят-бройлеров кросса Arbor Acress с определением их ассоциаций с составом кишечного микробиома и показателями продуктивности.

Материалы и методы. В исследование включены 28 групп цыплят-бройлеров, находившихся на базовом рационе, а также получавших различные кормовые добавки (пробиотики, антибиотики, малые молекулы растительного происхождения). Метаболомный профиль сывороток крови исследован с использованием коммерческих наборов для ветеринарии «ДиаВетТест» (ДИАКОН-ДС, Россия). Состав кишечного микробиома оценен на основе высокопроизводительного секвенирования на платформе MiSeq (Illumina Inc., США).

Результаты. Анализ ассоциаций сывороточных маркеров и морфологических показателей цыплят-бройлеров позволил зафиксировать четыре значимые взаимосвязи: положительную в паре «креатинин – мясная продуктивность» и отрицательные в парах «мочевина – масса несъедобной части тушки», «глюкоза – масса печени» и «холестерин – убойный выход». Сопоставление характеристик метаболома и состава кишечного микробиома показало множественные ассоциации, связывающие бактериальное сообщество с сывороточными уровнями малонового диальдегида, билирубина, мочевой кислоты и мочевины.

Заключение. Полученные результаты развивают представления о метаболических индикаторах, пригодных для мониторинга эффективности режимов содержания и кормления цыплят-бройлеров, а также впервые характеризуют мочевину, как маркер продуктивности, уровень которого может контролироваться через воздействие на кишечный микробиом сельскохозяйственной птицы.

цыплята-бройлерыметаболоммикробиомсельскохозяйственная продуктивностьbroiler chickensserum metabolomegut microbiomeagricultural productivityAndreeva, L. I., Kozhemyakin, L. A., & Kishkun, A. A. (1988). Modification of the method for determining lipid peroxides in the thiobarbituric acid test. Laboratornoe delo, (11), 41–43. EDN: https://elibrary.ru/SKGPQJАндреева, Л. И., Кожемякин, Л. А., & Кишкун, А. А. (1988). Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой. Лабораторное дело, (11), 41–43. EDN: https://elibrary.ru/SKGPQJBogolyubova, N. V., Nekrasov, R. V., Zelenchenkova, A. A., Rykov, R. A., Kolesnik, N. S., Volkova, N. A., & Vetokh, A. N. (2022). Biochemical profile of the body of chickens of different productivity directions. Veterinariya i kormlenie, (6), 11–15. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2022-6-3. EDN: https://elibrary.ru/BHDHWVБоголюбова, Н. В., Некрасов, Р. В., Зеленченкова, А. А., Рыков, Р. А., Колесник, Н. С., Волкова, Н. А., & Ветох, А. Н. (2022). Биохимический профиль организма кур разного направления продуктивности. Ветеринария и кормление, (6), 11–15. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2022-6-3. EDN: https://elibrary.ru/BHDHWVVertiprakhov, V. G., Ksenofontov, D. A., Kolesnik, E. A., & Ovchinnikova, N. V. (2022). Morpho-biochemical blood studies in agricultural poultry [Textbook]. Russian State Agrarian University — Moscow Timiryazev Agricultural Academy. ISBN: 978-5-9675-1938-3. EDN: https://elibrary.ru/RIUBDQВертипрахов, В. Г., Ксенофонтов, Д. А., Колесник, Е. А., & Овчинникова, Н. В. (2022). Морфо-биохимические исследования крови у сельскохозяйственной птицы [Учебное пособие]. РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева. ISBN: 978-5-9675-1938-3. EDN: https://elibrary.ru/RIUBDQDuskaev, G. K., Rakhmatullin, Sh. G., Kosyan, D. B., Rusakova, E. A., Kvan, O. V., & Levakhin, G. I. (2022). Effect of combined use of gamma-octalactone and chlortetracycline in the broiler diet: Live weight, feed utilization efficiency, and cecum microbiome. Agrarnaya nauka, (9), 47–53. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-362-9-47-53. EDN: https://elibrary.ru/FSEANCДускаев, Г. К., Рахматуллин, Ш. Г., Косян, Д. Б., Русакова, Е. А., Кван, О. В., & Левахин, Г. И. (2022). Влияние совместного использования гамма-окталактона и хлортетрациклина в рационе бройлеров: живая масса, эффективность использования корма и микробиом слепого кишечника. Аграрная наука, (9), 47–53. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-362-9-47-53. EDN: https://elibrary.ru/FSEANCDuskaev, G. K., Lazebnik, K. S., & Klimova, T. A. (2022). Assessment of microbial diversity in the cecum of broiler chickens when introducing coumarin and a feed antibiotic into the diet. Vestnik of the Peoples’ Friendship University of Russia. Series: Agronomy and Animal Husbandry, 17(4), 555–566. https://doi.org/10.22363/2312-797X-2022-17-4-555-566. EDN: https://elibrary.ru/FUHJBXДускаев, Г. К., Лазебник, К. С., & Климова, Т. А. (2022). Оценка микробного разнообразия слепого отдела кишечника цыплят-бройлеров при введении кумарина и кормового антибиотика в рацион. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство, 17(4), 555–566. https://doi.org/10.22363/2312-797X-2022-17-4-555-566. EDN: https://elibrary.ru/FUHJBXDuskaev, G. K., Rusakova, E. A., & Deryabin, D. G. (2022). Use of gamma-octanolactone in the broiler diet: Intestinal microbiome. Mezhdunarodnyy vestnik veterinarii, (4), 152–158. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.4.152. EDN: https://elibrary.ru/XGADAXДускаев, Г. К., Русакова, Е. А., & Дерябин, Д. Г. (2022). Использование гамма-октанолактона в рационе бройлеров: микробиом кишечника. Международный вестник ветеринарии, (4), 152–158. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.4.152. EDN: https://elibrary.ru/XGADAXDuskaev, G. K., Vlasenko, L. V., Kosyan, D. B., & Kurilkina, M. Ya. (2023). Effect of small plant-derived molecules on the microbial diversity of the cecum in broiler chickens. Ptitsevodstvo, (4), 46–51. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2023-72-4-46-51. EDN: https://elibrary.ru/SASHWFДускаев, Г. К., Власенко, Л. В., Косян, Д. Б., & Курилкина, М. Я. (2023). Влияние малых молекул растительного происхождения на микробное разнообразие слепого отдела кишечника цыплят-бройлеров. Птицеводство, (4), 46–51. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2023-72-4-46-51. EDN: https://elibrary.ru/SASHWFErimbetov, K. T., Obvintseva, O. V., & Mikhailov, V. V. (2018). Features of metabolism and formation of meat productivity in pigs of different genotypes. Problemy biologii produktivnykh zhivotnykh, (1), 51–63. https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2018.1.51-63. EDN: https://elibrary.ru/YRPEPFЕримбетов, К. Т., Обвинцева, О. В., & Михайлов, В. В. (2018). Особенности метаболизма и формирования мясной продуктивности у свиней разных генотипов. Проблемы биологии продуктивных животных, (1), 51–63. https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2018.1.51-63. EDN: https://elibrary.ru/YRPEPFZagarin, A. Yu. (2024). Characteristics of correlation relationships between biochemical blood parameters and morphological features of broiler chickens. Izvestiya of the Timiryazev Agricultural Academy, (4), 140–153. https://doi.org/10.26897/0021-342X-2024-4-140-153. EDN: https://elibrary.ru/IXDVXCЗагарин, А. Ю. (2024). Характеристика корреляционных связей между биохимическими показателями крови и морфологическими особенностями цыплят-бройлеров. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, (4), 140–153. https://doi.org/10.26897/0021-342X-2024-4-140-153. EDN: https://elibrary.ru/IXDVXCKulebyakin, K. Yu., Akopyan, Zh. A., Kochegura, T. N., & Penkov, D. N. (2016). Mechanisms of transcriptional control of glucose metabolism in the liver. Sakharnyy diabet, 19(3), 190–198. https://doi.org/10.14341/DM2003436-40. EDN: https://elibrary.ru/WKBQLJКулебякин, К. Ю., Акопян, Ж. А., Кочегура, Т. Н., & Пеньков, Д. Н. (2016). Механизмы транскрипционного контроля обмена глюкозы в печени. Сахарный диабет, 19(3), 190–198. https://doi.org/10.14341/DM2003436-40. EDN: https://elibrary.ru/WKBQLJAviagen. Normative indicators for Arbor Acres Plus broiler stock. Retrieved from https://fermer.ru/files/v2/forum/152289/17a-aa-broiler-po.pdfAviagen. Нормативные показатели бройлерного поголовья Arbor Acres Plus. Получено из https://fermer.ru/files/v2/forum/152289/17a-aa-broiler-po.pdfPikulik, A. A., Babicheva, I. A., & Senko, A. Ya. (2018). Effect of the combined use of tetralactobacterin and potassium iodide on the concentration of total protein and urea in the blood serum of broiler chickens. Izvestiya of the Orenburg State Agrarian University, (5), 271–273. EDN: https://elibrary.ru/YNDPZZПикулик, А. А., Бабичева, И. А., & Сенько, А. Я. (2018). Влияние сочетанного применения тетралактобактерина и йодида калия на концентрацию общего белка и мочевины в сыворотке крови цыплят-бройлеров. Известия Оренбургского государственного аграрного университета, (5), 271–273. EDN: https://elibrary.ru/YNDPZZStandartinform. (2010). Principles of good laboratory practice.Стандартинформ. (2010). Принципы надлежащей лабораторной практики.Regan, V. D., Sanders, T. G., & Denicola, D. B. (2008). Atlas of veterinary hematology (E. Makhiyanova, Trans.). Aquarium Print. ISBN: 978-5-98435-930-6. EDN: https://elibrary.ru/QKZJZJРиган, В. Д., Сандерс, Т. Г., & Деникола, Д. Б. (2008). Атлас ветеринарной гематологии (Е. Махиянова, Пер.). Аквариум-Принт. ISBN: 978-5-98435-930-6. EDN: https://elibrary.ru/QKZJZJSaleeva, I. P., Lysenko, V. P., Shol, V. G., et al. (2015). Methodology for conducting research on the technology of egg and poultry meat production (V. S. Lukashenko & A. Sh. Kavtarashvili, Eds.). All-Russian Research and Technological Institute of Poultry. ISBN: 978-5-98020-154-8.Салеева, И. П., Лысенко, В. П., Шоль, В. Г., и др. (2015). Методика проведения исследований по технологии производства яиц и мяса птицы (В. С. Лукашенко & А. Ш. Кавтарашвили, Ред.). ВНИТИП. ISBN: 978-5-98020-154-8Aviagen. (2022). Arbor Acres broiler feed ration specifications. Retrieved from https://aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/RUS_TechDocs/AA_BroilerNutritionSpecifications2022_RU.pdfAviagen. (2022). Спецификации бройлерных рационов корма Arbor Acres. Получено из https://aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/RUS_TechDocs/AA_BroilerNutritionSpecifications2022_RU.pdfArzour-Lakehal, N., & Boudebza, A. (2021). Biochemical reference intervals in broiler chickens according to age and strain. Agricultural Science and Technology, 13(4), 357–364. https://doi.org/10.15547/ast.2021.04.058. EDN: https://elibrary.ru/WAELGPBeauclercq, S., Nadal-Desbarats, L., Hennequet-Antier, C., Collin, A., Tesseraud, S., Bourin, M., Le Bihan-Duval, E., & Berri, C. (2016). Serum and muscle metabolomics for the prediction of ultimate pH, a key factor for chicken-meat quality. Journal of Proteome Research, 15(4), 1168–1178. https://doi.org/10.1021/acs.jproteome.5b01050Chen, Y., Wang, J., Yu, L., Xu, T., & Zhu, N. (2020). Microbiota and metabolome responses in the cecum and serum of broiler chickens fed with plant essential oils or virginiamycin. Scientific Reports, 10. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60135-x. EDN: https://elibrary.ru/WYYZXPChowdhury, S. D., Roy, C. R., & Sarker, A. K. (1996). Urea in poultry nutrition — Review. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 9(3), 241–245. https://doi.org/10.5713/ajas.1996.241Cox, T. O., Lundgren, P., Nath, K., & Thaiss, C. A. (2022). Metabolic control by the microbiome. Genome Medicine, 14(80). https://doi.org/10.1186/s13073-022-01092-0. EDN: https://elibrary.ru/PUTJNYDas, S., & Aminul Islam, M. (2023). Comparative growth, meat yield and blood lipid profiles of Arbor Acres, Cobb 500 and Lohmann broiler strains. International Journal of Agriculture Environment and Bioresearch, 8(3), 55–63. https://doi.org/10.35410/IJAEB.2023.5828. EDN: https://elibrary.ru/ZRZQDPDeryabin, D. G., Kosyan, D. B., Inchagova, K. S., & Duskaev, G. K. (2023). Plant-derived quorum sensing inhibitors (quercetin, vanillin and umbelliferon) modulate cecal microbiome, reduces inflammation and affect production efficiency in broiler chickens. Microorganisms, 11, 1326. https://doi.org/10.3390/microorganisms11051326. EDN: https://elibrary.ru/DTQURZDuskaev, G., Kvan, O., Kosyan, D., Rakhmatullin, S., & Levakhin, G. (2021). Coumarin derivative and Bacillus cereus change live weight and cecal ecology in broilers. AIMS Agriculture and Food, 6(1), 360–380. https://doi.org/10.3934/agrfood.2021022. EDN: https://elibrary.ru/NBMBIYFonknechten, N., Chaussonnerie, S., Tricot, S., Lajus, A., Andreesen, J. R., Perchat, N., Pelletier, E., Gouyvenoux, M., Barbe, V., Salanoubat, M., Le Paslier, D., Weissenbach, J., Cohen, G. N., & Kreimeyer, A. (2010). Clostridium sticklandii, a specialist in amino acid degradation: revisiting its metabolism through its genome sequence. BMC Genomics, 11(555). https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-555. EDN: https://elibrary.ru/NYOTGDFriedrichs, K. R., Harr, K. E., Freeman, K. P., Szladovits, B., Walton, R. M., Barnhart, K. F., & Blanco-Chavez, J. (2012). ASVCP reference interval guidelines: determination of de novo reference intervals in veterinary species and other related topics. Veterinary Clinical Pathology, 41(4), 441–453. https://doi.org/10.1111/vcp.12006Fujisaka, S., Watanabe, Y., & Tobe, K. (2023). The gut microbiome: A core regulator of metabolism. Journal of Endocrinology, 256(3), e220111. https://doi.org/10.1530/JOE-22-0111. EDN: https://elibrary.ru/FCNYKYGerritsen, J., Hornung, B., Ritari, J., Paulin, L., Rijkers, G., Schaap, P. J., De Vos, W. M., & Smidt, H. (2019). A comparative and functional genomics analysis of the genus Romboutsia provides insight into adaptation to an intestinal lifestyle. bioRxiv. https://doi.org/10.1101/845511Hall, B., Levy, S., Dufault-Thompson, K., Arp, G., Zhong, A., Ndjite, G. M., Weiss, A., Braccia, D., Jenkins, C., Grant, M. R., Abeysinghe, S., Yang, Y., Jermain, M. D., Wu, C. H., Ma, B., & Jiang, X. (2024). BilR is a gut microbial enzyme that reduces bilirubin to urobilinogen. Nature Microbiology, 9, 173–184. https://doi.org/10.1038/s41564-023-01549-x. EDN: https://elibrary.ru/UFYZMZHu, W., He, Z., Du, L., Zhang, L., Li, J., Ma, Y., & Bi, S. (2023). Biomarkers of oxidative stress in broiler chickens attacked by lipopolysaccharide: A systematic review and meta-analysis. Ecotoxicology and Environmental Safety, 266, 115606. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2023.115606. EDN: https://elibrary.ru/QZXKYJIndriani, S., Srisakultiew, N., Yuliana, N. D., Yongsawatdigul, J., Benjakul, S., & Pongsetkul, J. (2024). Metabolomic profiles and compositional differences involved in flavor characteristics of raw breast meat from slow- and fast-growing chickens in Thailand. Poultry Science, 103(11), 104230. https://doi.org/10.1016/j.psj.2024.104230. EDN: https://elibrary.ru/IKXEXWKarasawa, Y. (1989). Ammonia production from uric acid, urea, and amino acids and its absorption from the ceca of the cockerel. Journal of Experimental Zoology Supplement, 75–80. https://doi.org/10.1002/jez.1402520513Karisa, B. K., Thomson, J., Wang, Z., Li, C., Montanholi, Y. R., Miller, S. P., Moore, S. S., & Plastow, G. S. (2014). Plasma metabolites associated with residual feed intake and other productivity performance traits in beef cattle. Livestock Science, 165, 200–211. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2014.03.002Kırbaş, A., Kaman, R., Merhan, O., Bozukluhan, K., Değirmençay, S., & Sertaç, M. (2021). Evaluation of acute phase response and oxidative damage in sheep naturally infected with Streptococcus Pluranimalium using haptoglobin, nitric oxide, and malondialdehyde levels. Fırat University Veterinary Journal of Health Sciences, 35(3), 145–150.Krasnodebska-Depta, A., & Koncicki, A. (2000). Physiological values of selected serum biochemical indices in broiler chickens. Medycyna Weterynaryjna, 56(7), 456–460.Lee, D. J. (1977). Urease activity in the digestive tract of the chick and its role in the utilisation of urea as a source of non-amino nitrogen. British Poultry Science, 18(4), 449–458. https://doi.org/10.1080/00071667708416385Li, J., Akanno, E. C., Valente, T. S., Abo-Ismail, M., Karisa, B. K., Wang, Z., & Plastow, G. S. (2020). Genomic heritability and genome-wide association studies of plasma metabolites in crossbred beef cattle. Frontiers in Genetics, 11. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.538600. EDN: https://elibrary.ru/CNXOGSLichtenberg, S., Trifonova, O. P., Maslov, D. L., Balashova, E. E., & Lokhov, P. G. (2021). Metabolomic laboratory-developed tests: current status and perspectives. Metabolites, 11(7), 423. https://doi.org/10.3390/metabo11070423. EDN: https://elibrary.ru/RETLGKLin, T.-C., Soorneedi, A., Guan, Y., Tang, Y., Shi, E., Moore, M. D., & Liu, Z. (2023). Turicibacter fermentation enhances the inhibitory effects of Antrodia camphorata supplementation on tumorigenic serotonin and Wnt pathways and promotes ROS-mediated apoptosis of Caco-2 cells. Frontiers in Pharmacology, 14, 1203087. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1203087. EDN: https://elibrary.ru/WSUGZQLiu, T., Ruan, S., Mo, Q., Zhao, M., Wang, J., Ye, Z., Chen, L., & Feng, F. (2023). Integrated serum metabolome and gut microbiome to decipher chicken amino acid improvements induced by medium-chain monoglycerides. Metabolites, 13(2), 208. https://doi.org/10.3390/metabo13020208. EDN: https://elibrary.ru/IWIRMDLu, G., Li, Y., Mao, K., Zang, Y., Zhao, X., Qiu, Q., Qu, M., & Ouyang, K. (2022). Effects of rumen-protected creatine pyruvate on meat quality, hepatic gluconeogenesis, and muscle energy metabolism of long-distance transported beef cattle. Frontiers in Animal Science, 3, 904503. https://doi.org/10.3389/fanim.2022.904503. EDN: https://elibrary.ru/ZASGRZMarciano, D. P., & Snyder, M. P. (2019). Personalized metabolomics. В: D’Alessandro, A. (Ed.), High-Throughput Metabolomics (Methods in Molecular Biology, Vol. 1978). Humana. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-9236-2_27Matthies, C., Evers, S., Ludwig, W., & Schink, B. (2000). Anaerovorax odorimutans gen. nov., sp. nov., a putrescine-fermenting, strictly anaerobic bacterium. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 50, 1591–1594. https://doi.org/10.1099/00207713-50-4-1591Miao, X., Wu, T., Pan, H., Zhang, Y., Liu, J., Fan, Y., Du, L., Gong, Y., Li, L., Huang, T., & Ning, Z. (2024). Integrative analysis of the ovarian metabolome and transcriptome of the Yaoshan chicken and its improved hybrids. Frontiers in Genetics, 15, 1416283. https://doi.org/10.3389/fgene.2024.1416283. EDN: https://elibrary.ru/DUMSNGNagalakshmi, D., Sastry, V. R., Katiyar, R. C., Agrawal, D. K., & Verma, S. V. (1999). Performance of broiler chicks fed on diets containing urea ammoniated neem (Azadirachta indica) kernel cake. British Poultry Science, 40(1), 77–83. https://doi.org/10.1080/00071669987863Noecker, C., Sanchez, J., Bisanz, J. E., Escalante, V., Alexander, M., Trepka, K., Heinken, A., Liu, Y., Dodd, D., Thiele, I., DeFelice, B. C., & Turnbaugh, P. J. (2023). Systems biology elucidates the distinctive metabolic niche filled by the human gut microbe Eggerthella lenta. PLoS Biology, 21(5), e3002125. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3002125. EDN: https://elibrary.ru/AFXFVYQaid, M. M., Al-Mufarrej, S. I., Azzam, M. M., Al-Garadi, M. A., Albaadani, H. H., Alhidary, I. A., & Aljumaah, R. S. (2021). Growth performance, serum biochemical indices, duodenal histomorphology, and cecal microbiota of broiler chickens fed on diets supplemented with cinnamon bark powder at prestarter and starter phases. Animals, 11(1), 94. https://doi.org/10.3390/ani11010094. EDN: https://elibrary.ru/AZMFVBShajahmetova, E., Deryabin, D., & Duskaev, G. (2021). Gamma lactone and vanillic acid change the microbiome of broiler blind appendage. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 35(S1), S74. EDN: https://elibrary.ru/NMEVGQTian, J., Zhu, X., Wu, H., Wang, Y., & Hu, X. (2023). Serum metabolic profile and metabolome genome-wide association study in chicken. Journal of Animal Science and Biotechnology, 14(69). https://doi.org/10.1186/s40104-023-00868-7. EDN: https://elibrary.ru/RTBIPIVítek, L., & Tiribelli, C. (2025). Gut microbiota and bilirubin metabolism: unveiling new pathways in health and disease. Trends in Molecular Medicine. https://doi.org/10.1016/j.molmed.2024.12.007. EDN: https://elibrary.ru/BIATBMWu, M., Zuo, S., Maiorano, G., Kosobucki, P., & Stadnicka, K. (2022). How to employ metabolomic analysis to research on functions of prebiotics and probiotics in poultry gut health? Frontiers in Microbiology, 13, 1040434. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1040434. EDN: https://elibrary.ru/BPXNOXWuthier, P. R., & Stratton, P. O. (1957). The creatinine level of blood serum as an indicator of carcass composition. Journal of Animal Science, 16(4), 961–966. https://doi.org/10.2527/jas1957.164961xYang, S., Yang, Y., Long, X., Li, H., Zhang, F., & Wang, Z. (2023). Integrated analysis of the effects of cecal microbiota and serum metabolome on market weights of Chinese native chickens. Animals, 13(19), 3034. https://doi.org/10.3390/ani13193034. EDN: https://elibrary.ru/BPLPAE