Выявление носителей мутантных аллелей крупного рогатого скота на территории Центрально-Чернозёмного региона России с помощью NGS-секвенирования

  • Eduard A. Snegin Белгородский государственный национальный исследовательский университет https://orcid.org/0000-0002-7574-6910
  • Anatoliy S. Barkhatov Белгородский государственный национальный исследовательский университет https://orcid.org/0000-0001-9996-7251
  • Anton A. Sychev Белгородский государственный национальный исследовательский университет https://orcid.org/0000-0002-3311-0914
  • Elena A. Snegina Белгородский государственный национальный исследовательский университет https://orcid.org/0000-0003-1789-1121
  • Sergei R. Yusupov Белгородский государственный национальный исследовательский университет https://orcid.org/0000-0002-5425-8942
  • Alexandra Yu. Yusupova Белгородский государственный национальный исследовательский университет https://orcid.org/0000-0003-1838-7816
Ключевые слова: крупный рогатый скот, SNP, NGS-секвенирование, генотипирование, летальные аллели

Аннотация

Обоснование. Для проведения качественной селекционной работы в популяциях крупного рогатого скота необходимо использовать методы секвенирования нового поколения (NGS), которые позволяют за короткий промежуток времени оценить большие выборки животных по значительному количеству однонуклеотидных замен (SNP).

Материалы и методы. Проведено генотипирование крупного рогатого скота голштинской породы черно-пестрой масти, разводимого в центрально-черноземном регионе России (Белгородская область), с помощью NGS-секвенирования (мультилокусная панель TruSeq® Bovine Parentage Kit, Illumina США).

Результаты. Было установлено, что большинство исследуемых животных являются межлинейными гибридами. Корреляционный анализ на соответствие животных линий «Reflection Sovereign», «Montvik Chieftain» и «Vis Back Ideal» показал отсутствие корреляционной зависимости (r=0,165, р=0,106). Кроме того, 10,4 % голов являлись носителями гена, относящегося голштинской породе красно-пестрой масти. Также 61,5 % голов оказались носителями мутантного аллеля G (_SNPchr8_108833985), который снижает иммунитет и способствует развитию моракселлеза. Выявлены носители ряда неблагоприятных мутаций, таких как Синдактилия (SY) – 8.3 % голов, мутации, приводящие к лейкизму (ген MITF) – 12,3% голов; а также мутации гена мелакортинового рецептора (MC1R) – 10,4% голов. Носители полулетальной мутации (аллель Т) в гене APAF1 составили 3,0 % голов, носители летальной мутации (аллеля С) гена HH3 – 14,6% голов, носитель летальной мутации (аллеля С) гена HHB (BLAD) – 1,0% голов, носители полулетальной мутации (аллеля А) гена SLC35A3 – 2,0% голов. Все это свидетельствует об ошибках в селекционной работе. На фоне указанных неблагоприятных генетических факторов был отмечены носители мутаций с положительным эффектом, влияющих на мясную и молочную продуктивность, а именно: носители мутации гена MSTN (аллель Т) – 50% голов, носители мутации в гене ABCG2 (аллель С) – 4,2 % голов, носители мутации в гене DGAT1 (аллель А) – 28.1 % голов, носитель мутации в гене CSN1S1 (аллель А) – 1 % голов.

Заключение. Полагаем, что корректировка селекционной работы в отношение указанных мутаций, как с отрицательным, так и с положительным эффектом, позволит хозяйствам создавать племенные ядра высокопродуктивных животных, что будет способствовать повышение количества и качества молочной продукции.

EDN: RCSHPU

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Eduard A. Snegin, Белгородский государственный национальный исследовательский университет

д-р биол. наук, профессор, директор НИЦ Геномной селекции

Anatoliy S. Barkhatov, Белгородский государственный национальный исследовательский университет

к.б.н., младший научный сотрудник НИЦ Геномной селекции

Anton A. Sychev, Белгородский государственный национальный исследовательский университет

к.б.н., старший научный сотрудник НИЦ Геномной селекции

Elena A. Snegina, Белгородский государственный национальный исследовательский университет

научный сотрудник НИЦ Геномной селекции

Sergei R. Yusupov, Белгородский государственный национальный исследовательский университет

младший научный сотрудник НИЦ Геномной селекции

Alexandra Yu. Yusupova, Белгородский государственный национальный исследовательский университет

младший научный сотрудник НИЦ Геномной селекции

Литература

Романишко, Е. Л., Михайлова, М. Е., Киреева, А. И., & Шейко, Р. И. (2021). Выявление гаплотипов фертильности в белорусской популяции крупного рогатого скота голштинской породы. Молекулярная и прикладная генетика, 31, 7-21. https://doi.org/10.47612/1999-9127-2021-31-7-21 EDN: https://elibrary.ru/SOVXXS

Епишко, О. А., Пестис, В. К., Танана, Л. А., Кузьмина, Т. И., Чебуранова, Е. С., Шевченко, М. Ю., Петрова, А. П., Глинская, Н. А., & Трахимчик, Р. В. (2017). Определение рецессивных мутаций BLAD, CVM и BS в популяции крупного рогатого скота молочного направления Республики Беларусь. Сборник научных трудов. Сельское хозяйство — проблемы и перспективы. Зоотехния, 37, 44-51. EDN: https://elibrary.ru/YOZAWL

Загидуллин, Л. Р., Шайдуллин, Р. Р., Ахметов, Т. М., & Тюлькин, С. В. (2020). Полиморфизм генов каппа-казеина и диацилглицерол О-ацилтрансферазы у черно-пестрого скота. Молочнохозяйственный вестник, 37(1), 24-34. EDN: https://elibrary.ru/TUJEVN

Романенкова, О. В., Гладырь, Е. А., Костюнина, О. В., & Зиновьева, Н. А. (2016). Скрининг российской популяции крупного рогатого скота на наличие мутации в APAF1, ассоциированной с гаплотипом фертильности HH1. Достижения науки и техники АПК, 30(2), 94-97. EDN: https://elibrary.ru/VPIDTX

Тюлькин, С. В. (2019). Молекулярно-генетическое тестирование крупного рогатого скота по генам белков молока, гормонов, фермента и наследственных заболеваний. Автореф. дис. д-ра биол. наук. Казань. 46 с. EDN: https://elibrary.ru/BBNXRA

Усенбеков, Е. С., Яковлев, А. Ф., & Акимжан, Н. А. (2016). Результаты мониторинга быков-производителей на носительство генетических дефектов. Вестник КазНУ. Серия биологическая, 67(2), 129-139.

Шуклин, С. Ю. (2022). Использование STR-маркеров и SNP чипов при формировании высокопродуктивного поголовья молочного скота. Автореф. дис. канд. биол. наук. Лесные Поляны, Московская область. 22 с. EDN: https://elibrary.ru/ZNOYQF

Turner, L. B., Harrison, B. E., Bunch, R. J., Porto Neto, L. R., Li, Y., & Barendse, W. (2010). A genome-wide association study of tick burden and milk composition in cattle. Animal Production Science, 50(4), 235-245. https://doi.org/10.1071/AN09135

Zhang, Y., Fan, X., Sun, D., Wang, Y., Yu, Y., Xie, Y., Zhang, S., & Zhang, Y. (2012). A novel method for rapid and reliable detection of complex vertebral malformation and bovine leukocyte adhesion deficiency in Holstein cattle. Journal of Animal Science and Biotechnology, 3(1), 24. https://doi.org/10.1186/2049-1891-3-24

Akyüz, B., & Ertuğrul, O. (2006). Detection of bovine leukocyte adhesion deficiency (BLAD) in Turkish native and Holstein cattle. Acta Veterinaria Hungarica, 54(2), 173-178. https://doi.org/10.1556/AVet.54.2006

Sifuentes-Rincón, A. M., Puentes-Montiel, H. E., Moreno-Medina, V. R., & Rosa-Reyna, X. F. (2006). Assessment of the myostatin Q204X allele using an allelic discrimination assay. Genetics and Molecular Biology, 29(3), 496-497. https://doi.org/10.1590/S1415-47572006000300017

Mesquita, A. Q., Rezende, C. S. M., Mesquita, A. J., Jardim, E. A. G. V., & Kipnis, A. P. J. (2012). Association of TLR4 polymorphisms with subclinical mastitis in Brazilian Holsteins. Brazilian Journal of Microbiology, 43(2), 692-697. https://doi.org/10.1590/S1517-83822012000200034

Cole, J. B., Null, D. J., & Van Raden, P. M. (2016). Phenotypic and genetic effects of recessive haplotypes on yield, longevity, and fertility. Journal of Dairy Science, 99(9), 7274-7288. https://doi.org/10.3168/jds.2015-10777

Igoshin, A. V., Romashov, G. A., Chernyaeva, E. N., Elatkin, N. P., Yudin, N. S., & Larkin, D. M. (2022). Comparative analysis of allele frequencies for DNA polymorphisms associated with disease and economically important traits in the genomes of Russian and foreign cattle breeds. Vavilov Journal of Genetics and Breeding, 26(3), 298-307. https://doi.org/10.18699/VJGB-22-28 EDN: https://elibrary.ru/WLUUNI

Ghanem, M. E., Akita, M., Suzuki, T., Kasuga, A., & Nishiboi, M. (2008). Complex vertebral malformation in Holstein cows in Japan and its inheritance to crossbred F1 generation. Animal Reproduction Science, 103(3-4), 348-354. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2007.05.006

Johnson, E. B., Steffen, D. J., Lynch, K. W., & Herz, J. (2006). Defective splicing of Megf7/Lrp4, a regulator of distal limb development, in autosomal recessive mulefoot disease. Genomics, 88, 600-609. https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2006.08.005

Kumar, A., Gupta, I. D., Mohan, G., Vineeth, M. R., Kumar, D. R., Jayakumar, S., & Niranjan, S. K. (2020). Development of PCR based assays for detection of lethal Holstein haplotype 1, 3 and 4 in Holstein Friesian cattle. Molecular and Cellular Probes, 50, 101503. https://doi.org/10.1016/j.mcp.2019.101503 EDN: https://elibrary.ru/FNVMGE

Fritz, S., Capitan, A., Djari, A., Rodriguez, S. C., Barbat, A., Baur, A., Grohs, C., Weiss, B., Boussaha, M., Esquerre, D., Klopp, C., Rocha, D., & Boichard, D. (2013). Detection of Haplotypes Associated with Prenatal Death in Dairy Cattle and Identification of Deleterious Mutations in GART, SHBG and SLC37A2. PLoS ONE, 8(6), e65550. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0065550 EDN: https://elibrary.ru/RJOLRV

Li, F., Cai, C., Qu, K., Liu, J., Jia, Y., Hanif, Q., Chen, N., Zhang, J., Chen, H., Huang, B., & Lei, C. (2021). DGAT1 K232A polymorphism is associated with milk production traits in Chinese cattle. Animal Biotechnology, 32(4), 427-431. https://doi.org/10.1080/10495398.2020.1711769 EDN: https://elibrary.ru/MPQIGT

Arora, D., Srikanth, K., Lim, D., Park, J., Choi, S., Lee, S. H., Shin, D. H., & Park, W. (2021). Exploration of OMIA Registered Recessive Mutations in Hanwoo Cattle. Journal of Agriculture & Life Science, 55(2), 137-143. https://doi.org/10.14397/jals.2021.55.2.137 EDN: https://elibrary.ru/PPVEAS

Fontanesi, L., Scotti, E., & Russo, V. (2012). Haplotype variability in the bovine MITF gene and association with piebaldism in Holstein and Simmental cattle breeds. Animal Genetics, 43(3), 250-256. https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2011.02242.x

Häfliger, I. M., Spengeler, M., Seefried, F. R., & Drögemüller, C. (2022). Four novel candidate causal variants for deficient homozygous haplotypes in Holstein cattle. Scientific Reports, 12(1), 5435. https://doi.org/10.1038/s41598-022-09403-6 EDN: https://elibrary.ru/SGDZQS

Kumar, S., Kumar, S., Singh, R. V., Chauhan, A., Kumar, A., Sulabh, S., Bharati, J., & Singh, S. V. (2019). Genetic association of polymorphisms in bovine TLR2 and TLR4 genes with Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection in Indian cattle population. Veterinary Research Communications, 43, 105-114. https://doi.org/10.1007/s11259-019-09750-2 EDN: https://elibrary.ru/OBMXRA

Sermyagin, A. A., Conte, A. F., Volkova, V. V., Romanenkova, O. S., Kharzhau, A. A., Reyer, H., Wimmers, K., Brem, G., & Zinovieva, N. A. (2018). Genetic highlights for reproduction and health traits in Russian black-and-white and Holstein animals selected for production of high-quality embryos. Reproduction, Fertility and Development, 30(1), 199. https://doi.org/10.1071/RDv30n1Ab119 EDN: https://elibrary.ru/XVWBID

Wang, X., Xu, S., Gao, X., Ren, H., & Chen, J. (2007). Genetic polymorphism of TLR4 gene and correlation with mastitis in cattle. Journal of Genetics and Genomics, 34(5), 406-412. https://doi.org/10.1016/S1673-8527(07)60044-7

Ruiz-Larranaga, O., Manzano, C., Iriondo, M., Garrido, J. M., Molina, E., Vazquez, P., Juste, R. A., & Estonba, A. (2011). Genetic variation of toll-like receptor genes and infection by Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis in Holstein-Friesian cattle. Journal of Dairy Science, 94(7), 3635-3641. https://doi.org/10.3168/jds.2010-3788

Cohen-Zinder, M., Seroussi, E., Larkin, D. M., Loor, J. J., Wind, A. E., Lee, J.-H., Drackley, J. K., Band, M. R., Hernandez, A. G., Shani, M., Lewin, H. A., Weller, J. I., & Ron, M. (2006). Identification of a missense mutation in the bovine ABCG2 gene with a major effect on the QTL on chromosome 6 affecting milk yield and composition in Holstein cattle. Genome Research, 15, 936-944. https://doi.org/10.1101/gr.3806705

Tăbăran, A., Balteanu, V. A., Gal, E., Pusta, D., Mihaiu, R., Dan, S. D., Tăbăran, A. F., & Mihaiu, M. (2015). Influence of DGAT1 K232A Polymorphism on Milk Fat Percentage and Fatty Acid Profiles in Romanian Holstein Cattle. Animal Biotechnology, 26(2), 105-111. https://doi.org/10.1080/10495398.2014.933740

Khatib, A., Mazur, A. M., & Prokhortchouk, E. (2020). The distribution of lethal Holstein haplotypes affecting female fertility among the Russian Black-and-White cattle. EurAsian Journal of Biosciences, 14(2), 2545-2552. EDN: https://elibrary.ru/WVDVMW

Komisarek, J., & Dorynek, Z. (2009). Effect of ABCG2, PPARGC1A, OLR1 and SCD1 gene polymorphism on estimated breeding values for functional and production traits in Polish Holstein-Friesian bulls. Journal of Applied Genetics, 50(2), 125-132. https://doi.org/10.1007/BF03195663 EDN: https://elibrary.ru/BLUBGD

Kaminski, S. (2020). Novel method for identification of the lethal mutation in bovine APAF1 gene and its preliminary prevalence in Polish Holstein-Friesian bulls. Polish Journal of Veterinary Sciences, 23(1), 157-160. https://doi.org/10.24425/pjvs.2020.132760 EDN: https://elibrary.ru/SEPOII

Kowalewska-Łuczak, I., & Kulig, H. (2013). Polymorphism of the FAM13A, ABCG2, OPN, LAP3, HCAP-G, PPARGC1A genes and somatic cell count of Jersey cows - Preliminary study. Research in Veterinary Science, 94(2), 252-255. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2012.08.006 EDN: https://elibrary.ru/RMJNIZ

Kolenda, M., & Sitkowska, B. (2021). The Polymorphism in Various Milk Protein Genes in Polish Holstein-Friesian Dairy Cattle. Animals, 11(2), 389. https://doi.org/10.3390/ani11020389 EDN: https://elibrary.ru/TABYKS

Briano-Rodriguez, C., Romero, A., Llambí, S., Sica, A. B., Rodriguez, M. T. F., Giannitti, F., Rubén Dario Caffarena, R. D., Schild, C. O., Casaux, M. L., & Quintela, F. D. (2021). Lethal and semi-lethal mutations in Holstein calves in Uruguay. Ciência Rural, 51(7). https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20200734 EDN: https://elibrary.ru/UFIVOF

Logar, B., Kavar, T., & Meglič, V. (2008). Detection of recessive mutations (CVM, BLAD and RED factor) in holstein bulls in Slovenia. Journal of Central European Agriculture, 9(1), 101-106.

Matsumoto, H., Kojya, M., Takamuku, H., Kimura, S., Kashimura, A., Imai, S., Yamauchi, K., & Ito, S. (2020). MC1R c.310G>- and c.871G > A determine the coat color of Kumamoto sub-breed of Japanese Brown cattle. Animal Science Journal, 91(1), 13367. https://doi.org/10.1111/asj.13367 EDN: https://elibrary.ru/NKCTQT

Meydan, H., Yildiz, M. A., & Agerholm, J. S. (2010). Screening for bovine leukocyte adhesion deficiency, deficiency of uridine monophosphate synthase, complex vertebral malformation, bovine citrullinaemia, and factor XI deficiency in Holstein cows reared in Turkey. Acta Veterinaria Scandinavica, 52(1), 56. https://doi.org/10.1186/1751-0147-52-56 EDN: https://elibrary.ru/OMEZZT

Morales, R., & Ungerfeld, E. M. (2016). Milk fatty acid profile is modulated by DGAT1 and SCD1 genotypes in dairy cattle on pasture and strategic supplementation. Genetics and Molecular Research, 15(2), 15027057. https://doi.org/10.4238/gmr.15027057

Nanaei, H. A., Mahyari, S. A., & Edriss, M.-A. (2014). Effect of LEPR, ABCG2 and SCD1 Gene Polymorphisms on Reproductive Traits in the Iranian Holstein Cattle. Reproduction in Domestic Animals, 49(5), 769-774. https://doi.org/10.1111/rda.12365

Zhang, Y., Li, Q., Ye, S., Faruque, M. O., Yu, Y., Sun, D., Zhang, S., & Wang, Y. (2014). New variants in the melanocortin 1 receptor gene (MC1R) in Asian cattle. Animal Genetics, 45(4), 609-610. https://doi.org/10.1111/age.12160

Pritchard, J. K., Wen, X., & Falush, D. (2010). Documentation for structure software: Version 2.3. Retrieved from http://pritch.bsd.unicado.edu/structure.html

Ron, M., Cohen-Zinder, M., Peter, C., Weller, J. I., & Erhardt, G. (2006). Short Communication: A Polymorphism in ABCG2 in Bos indicus and Bos taurus Cattle Breeds. Journal of Dairy Science, 89, 4921-4923. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(06)72542-5

Gopi, B., Singh, R. V., Kumar, S. a., Kumar, S. u., Chauhan, A., Kumar, A., & Singh, S. V. (2020). Single-nucleotide polymorphisms in CLEC7A, CD209 and TLR4 gene and their association with susceptibility to paratuberculosis in Indian cattle. Journal of Genetics, 99, 14. https://doi.org/10.1007/s12041-019-1172-4 EDN: https://elibrary.ru/GPALQP

Zhang, Y., Liang, D., Huang, H., Yang, Z., Wang, Y., Yu, Y., Liu, L., Zhang, S., Han, J., & Xiao, W. (2020). Technical note: Development and application of KASP assays for rapid screening of 8 genetic defects in Holstein cattle. Journal of Dairy Science, 103(1), 619-624. https://doi.org/10.3168/jds.2019-16345 EDN: https://elibrary.ru/CKCEKF

Chessa, S., Gattolin, S., Cremonesi, P., Soglia, D., Finocchiaro, R., Van Kaam, J. T., Marusi, M., & Civati, G. (2020). The effect of selection on casein genetic polymorphisms and haplotypes in Italian Holstein cattle. Italian Journal of Animal Science, 19(1), 833-839. https://doi.org/10.1080/1828051X.2020.1802356 EDN: https://elibrary.ru/MQDAIV

Allais, S., Levéziel, H. H., Payet-Duprat, N., Hocquette, J. F., Lepetit, J., Rousset, S., Denoyelle, C., Bernard-Capel, C., Journaux, L., Bonnot, A., & Renand, G. (2010). The two mutations, Q204X and nt821, of the myostatin gene affect carcass and meat quality in young heterozygous bulls of French beef breeds. Journal of Animal Science, 88(2), 446-454. https://doi.org/10.2527/jas.2009-2385

Yildirim, M., & Sahin, E. (2010). ABCG2 Gene polymorphism in Holstein cows of Turkey. Kafkas Universitesi Veteriner Fakultesi Dergisi, 16(3), 473-476. https://doi.org/10.9775/kvfd.2009.1047

References

Romanishko, E. L., Mikhailova, M. E., Kireeva, A. I., & Sheiko, R. I. (2021). Identification of fertility haplotypes in the Belarusian population of Holstein cattle. Molecular and Applied Genetics, 31, 7-21. https://doi.org/10.47612/1999-9127-2021-31-7-21 EDN: https://elibrary.ru/SOVXXS

Epishko, O. A., Pestis, V. K., Tanana, L. A., Kuzmina, T. I., Cheburanova, E. S., Shevchenko, M. Yu., Petrova, A. P., Glinkskaya, N. A., & Trakhimchik, R. V. (2017). Detection of BLAD, CVM and BS recessive mutations in the population of dairy cattle of the Republic of Belarus. Collection of Scientific Papers. Agriculture — Problems and Prospects. Animal Husbandry, 37, 44-51. EDN: https://elibrary.ru/YOZAWL

Zagidullin, L. R., Shaydullin, R. R., Akhmetov, T. M., & Tyulkyn, S. V. (2020). Polymorphism of kappa-casein and diacylglycerol O-acyltransferase genes in black-and-white cattle. Dairy Industry Herald, 37(1), 24-34. EDN: https://elibrary.ru/TUJEVN

Romanenkova, O. V., Gladyr, E. A., Kostyunina, O. V., & Zinovieva, N. A. (2016). Screening of the Russian population of cattle for the presence of a mutation in APAF1 associated with the fertility haplotype HH1. Achievements of Science and Technology of Agroindustrial Complex, 30(2), 94-97. EDN: https://elibrary.ru/VPIDTX

Tyulkyn, S. V. (2019). Molecular genetic testing of cattle for milk protein genes, hormones, enzymes and hereditary diseases (Doctoral dissertation). Kazan. 46 p. EDN: https://elibrary.ru/BBNXRA

Usenbekov, E. S., Yakovlev, A. F., & Akimzhan, N. A. (2016). Results of monitoring bulls for genetic defects. Bulletin of KazNU. Biological Series, 67(2), 129-139.

Shuklin, S. Yu. (2022). Use of STR markers and SNP chips in the formation of a highly productive herd of dairy cattle (Master's thesis). Lesnaya Polyana, Moscow region. 22 p. EDN: https://elibrary.ru/ZNOYQF

Turner, L. B., Harrison, B. E., Bunch, R. J., Porto Neto, L. R., Li, Y., & Barendse, W. (2010). A genome-wide association study of tick burden and milk composition in cattle. Animal Production Science, 50(4), 235-245. https://doi.org/10.1071/AN09135

Zhang, Y., Fan, X., Sun, D., Wang, Y., Yu, Y., Xie, Y., Zhang, S., & Zhang, Y. (2012). A novel method for rapid and reliable detection of complex vertebral malformation and bovine leukocyte adhesion deficiency in Holstein cattle. Journal of Animal Science and Biotechnology, 3(1), 24. https://doi.org/10.1186/2049-1891-3-24

Akyüz, B., & Ertuğrul, O. (2006). Detection of bovine leukocyte adhesion deficiency (BLAD) in Turkish native and Holstein cattle. Acta Veterinaria Hungarica, 54(2), 173-178. https://doi.org/10.1556/AVet.54.2006

Sifuentes-Rincón, A. M., Puentes-Montiel, H. E., Moreno-Medina, V. R., & Rosa-Reyna, X. F. (2006). Assessment of the myostatin Q204X allele using an allelic discrimination assay. Genetics and Molecular Biology, 29(3), 496-497. https://doi.org/10.1590/S1415-47572006000300017

Mesquita, A. Q., Rezende, C. S. M., Mesquita, A. J., Jardim, E. A. G. V., & Kipnis, A. P. J. (2012). Association of TLR4 polymorphisms with subclinical mastitis in Brazilian Holsteins. Brazilian Journal of Microbiology, 43(2), 692-697. https://doi.org/10.1590/S1517-83822012000200034

Cole, J. B., Null, D. J., & Van Raden, P. M. (2016). Phenotypic and genetic effects of recessive haplotypes on yield, longevity, and fertility. Journal of Dairy Science, 99(9), 7274-7288. https://doi.org/10.3168/jds.2015-10777

Igoshin, A. V., Romashov, G. A., Chernyaeva, E. N., Elatkin, N. P., Yudin, N. S., & Larkin, D. M. (2022). Comparative analysis of allele frequencies for DNA polymorphisms associated with disease and economically important traits in the genomes of Russian and foreign cattle breeds. Vavilov Journal of Genetics and Breeding, 26(3), 298-307. https://doi.org/10.18699/VJGB-22-28 EDN: https://elibrary.ru/WLUUNI

Ghanem, M. E., Akita, M., Suzuki, T., Kasuga, A., & Nishiboi, M. (2008). Complex vertebral malformation in Holstein cows in Japan and its inheritance to crossbred F1 generation. Animal Reproduction Science, 103(3-4), 348-354. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2007.05.006

Johnson, E. B., Steffen, D. J., Lynch, K. W., & Herz, J. (2006). Defective splicing of Megf7/Lrp4, a regulator of distal limb development, in autosomal recessive mulefoot disease. Genomics, 88, 600-609. https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2006.08.005

Kumar, A., Gupta, I. D., Mohan, G., Vineeth, M. R., Kumar, D. R., Jayakumar, S., & Niranjan, S. K. (2020). Development of PCR based assays for detection of lethal Holstein haplotype 1, 3 and 4 in Holstein Friesian cattle. Molecular and Cellular Probes, 50, 101503. https://doi.org/10.1016/j.mcp.2019.101503 EDN: https://elibrary.ru/FNVMGE

Fritz, S., Capitan, A., Djari, A., Rodriguez, S. C., Barbat, A., Baur, A., Grohs, C., Weiss, B., Boussaha, M., Esquerre, D., Klopp, C., Rocha, D., & Boichard, D. (2013). Detection of Haplotypes Associated with Prenatal Death in Dairy Cattle and Identification of Deleterious Mutations in GART, SHBG and SLC37A2. PLoS ONE, 8(6), e65550. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0065550 EDN: https://elibrary.ru/RJOLRV

Li, F., Cai, C., Qu, K., Liu, J., Jia, Y., Hanif, Q., Chen, N., Zhang, J., Chen, H., Huang, B., & Lei, C. (2021). DGAT1 K232A polymorphism is associated with milk production traits in Chinese cattle. Animal Biotechnology, 32(4), 427-431. https://doi.org/10.1080/10495398.2020.1711769 EDN: https://elibrary.ru/MPQIGT

Arora, D., Srikanth, K., Lim, D., Park, J., Choi, S., Lee, S. H., Shin, D. H., & Park, W. (2021). Exploration of OMIA Registered Recessive Mutations in Hanwoo Cattle. Journal of Agriculture & Life Science, 55(2), 137-143. https://doi.org/10.14397/jals.2021.55.2.137 EDN: https://elibrary.ru/PPVEAS

Fontanesi, L., Scotti, E., & Russo, V. (2012). Haplotype variability in the bovine MITF gene and association with piebaldism in Holstein and Simmental cattle breeds. Animal Genetics, 43(3), 250-256. https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2011.02242.x

Häfliger, I. M., Spengeler, M., Seefried, F. R., & Drögemüller, C. (2022). Four novel candidate causal variants for deficient homozygous haplotypes in Holstein cattle. Scientific Reports, 12(1), 5435. https://doi.org/10.1038/s41598-022-09403-6 EDN: https://elibrary.ru/SGDZQS

Kumar, S., Kumar, S., Singh, R. V., Chauhan, A., Kumar, A., Sulabh, S., Bharati, J., & Singh, S. V. (2019). Genetic association of polymorphisms in bovine TLR2 and TLR4 genes with Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection in Indian cattle population. Veterinary Research Communications, 43, 105-114. https://doi.org/10.1007/s11259-019-09750-2 EDN: https://elibrary.ru/OBMXRA

Sermyagin, A. A., Conte, A. F., Volkova, V. V., Romanenkova, O. S., Kharzhau, A. A., Reyer, H., Wimmers, K., Brem, G., & Zinovieva, N. A. (2018). Genetic highlights for reproduction and health traits in Russian black-and-white and Holstein animals selected for production of high-quality embryos. Reproduction, Fertility and Development, 30(1), 199. https://doi.org/10.1071/RDv30n1Ab119 EDN: https://elibrary.ru/XVWBID

Wang, X., Xu, S., Gao, X., Ren, H., & Chen, J. (2007). Genetic polymorphism of TLR4 gene and correlation with mastitis in cattle. Journal of Genetics and Genomics, 34(5), 406-412. https://doi.org/10.1016/S1673-8527(07)60044-7

Ruiz-Larranaga, O., Manzano, C., Iriondo, M., Garrido, J. M., Molina, E., Vazquez, P., Juste, R. A., & Estonba, A. (2011). Genetic variation of toll-like receptor genes and infection by Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis in Holstein-Friesian cattle. Journal of Dairy Science, 94(7), 3635-3641. https://doi.org/10.3168/jds.2010-3788

Cohen-Zinder, M., Seroussi, E., Larkin, D. M., Loor, J. J., Wind, A. E., Lee, J.-H., Drackley, J. K., Band, M. R., Hernandez, A. G., Shani, M., Lewin, H. A., Weller, J. I., & Ron, M. (2006). Identification of a missense mutation in the bovine ABCG2 gene with a major effect on the QTL on chromosome 6 affecting milk yield and composition in Holstein cattle. Genome Research, 15, 936-944. https://doi.org/10.1101/gr.3806705

Tăbăran, A., Balteanu, V. A., Gal, E., Pusta, D., Mihaiu, R., Dan, S. D., Tăbăran, A. F., & Mihaiu, M. (2015). Influence of DGAT1 K232A Polymorphism on Milk Fat Percentage and Fatty Acid Profiles in Romanian Holstein Cattle. Animal Biotechnology, 26(2), 105-111. https://doi.org/10.1080/10495398.2014.933740

Khatib, A., Mazur, A. M., & Prokhortchouk, E. (2020). The distribution of lethal Holstein haplotypes affecting female fertility among the Russian Black-and-White cattle. EurAsian Journal of Biosciences, 14(2), 2545-2552. EDN: https://elibrary.ru/WVDVMW

Komisarek, J., & Dorynek, Z. (2009). Effect of ABCG2, PPARGC1A, OLR1 and SCD1 gene polymorphism on estimated breeding values for functional and production traits in Polish Holstein-Friesian bulls. Journal of Applied Genetics, 50(2), 125-132. https://doi.org/10.1007/BF03195663 EDN: https://elibrary.ru/BLUBGD

Kaminski, S. (2020). Novel method for identification of the lethal mutation in bovine APAF1 gene and its preliminary prevalence in Polish Holstein-Friesian bulls. Polish Journal of Veterinary Sciences, 23(1), 157-160. https://doi.org/10.24425/pjvs.2020.132760 EDN: https://elibrary.ru/SEPOII

Kowalewska-Łuczak, I., & Kulig, H. (2013). Polymorphism of the FAM13A, ABCG2, OPN, LAP3, HCAP-G, PPARGC1A genes and somatic cell count of Jersey cows - Preliminary study. Research in Veterinary Science, 94(2), 252-255. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2012.08.006 EDN: https://elibrary.ru/RMJNIZ

Kolenda, M., & Sitkowska, B. (2021). The Polymorphism in Various Milk Protein Genes in Polish Holstein-Friesian Dairy Cattle. Animals, 11(2), 389. https://doi.org/10.3390/ani11020389 EDN: https://elibrary.ru/TABYKS

Briano-Rodriguez, C., Romero, A., Llambí, S., Sica, A. B., Rodriguez, M. T. F., Giannitti, F., Rubén Dario Caffarena, R. D., Schild, C. O., Casaux, M. L., & Quintela, F. D. (2021). Lethal and semi-lethal mutations in Holstein calves in Uruguay. Ciência Rural, 51(7). https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20200734 EDN: https://elibrary.ru/UFIVOF

Logar, B., Kavar, T., & Meglič, V. (2008). Detection of recessive mutations (CVM, BLAD and RED factor) in holstein bulls in Slovenia. Journal of Central European Agriculture, 9(1), 101-106.

Matsumoto, H., Kojya, M., Takamuku, H., Kimura, S., Kashimura, A., Imai, S., Yamauchi, K., & Ito, S. (2020). MC1R c.310G>- and c.871G > A determine the coat color of Kumamoto sub-breed of Japanese Brown cattle. Animal Science Journal, 91(1), 13367. https://doi.org/10.1111/asj.13367 EDN: https://elibrary.ru/NKCTQT

Meydan, H., Yildiz, M. A., & Agerholm, J. S. (2010). Screening for bovine leukocyte adhesion deficiency, deficiency of uridine monophosphate synthase, complex vertebral malformation, bovine citrullinaemia, and factor XI deficiency in Holstein cows reared in Turkey. Acta Veterinaria Scandinavica, 52(1), 56. https://doi.org/10.1186/1751-0147-52-56 EDN: https://elibrary.ru/OMEZZT

Morales, R., & Ungerfeld, E. M. (2016). Milk fatty acid profile is modulated by DGAT1 and SCD1 genotypes in dairy cattle on pasture and strategic supplementation. Genetics and Molecular Research, 15(2), 15027057. https://doi.org/10.4238/gmr.15027057

Nanaei, H. A., Mahyari, S. A., & Edriss, M.-A. (2014). Effect of LEPR, ABCG2 and SCD1 Gene Polymorphisms on Reproductive Traits in the Iranian Holstein Cattle. Reproduction in Domestic Animals, 49(5), 769-774. https://doi.org/10.1111/rda.12365

Zhang, Y., Li, Q., Ye, S., Faruque, M. O., Yu, Y., Sun, D., Zhang, S., & Wang, Y. (2014). New variants in the melanocortin 1 receptor gene (MC1R) in Asian cattle. Animal Genetics, 45(4), 609-610. https://doi.org/10.1111/age.12160

Pritchard, J. K., Wen, X., & Falush, D. (2010). Documentation for structure software: Version 2.3. Retrieved from http://pritch.bsd.unicado.edu/structure.html

Ron, M., Cohen-Zinder, M., Peter, C., Weller, J. I., & Erhardt, G. (2006). Short Communication: A Polymorphism in ABCG2 in Bos indicus and Bos taurus Cattle Breeds. Journal of Dairy Science, 89, 4921-4923. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(06)72542-5

Gopi, B., Singh, R. V., Kumar, S. a., Kumar, S. u., Chauhan, A., Kumar, A., & Singh, S. V. (2020). Single-nucleotide polymorphisms in CLEC7A, CD209 and TLR4 gene and their association with susceptibility to paratuberculosis in Indian cattle. Journal of Genetics, 99, 14. https://doi.org/10.1007/s12041-019-1172-4 EDN: https://elibrary.ru/GPALQP

Zhang, Y., Liang, D., Huang, H., Yang, Z., Wang, Y., Yu, Y., Liu, L., Zhang, S., Han, J., & Xiao, W. (2020). Technical note: Development and application of KASP assays for rapid screening of 8 genetic defects in Holstein cattle. Journal of Dairy Science, 103(1), 619-624. https://doi.org/10.3168/jds.2019-16345 EDN: https://elibrary.ru/CKCEKF

Chessa, S., Gattolin, S., Cremonesi, P., Soglia, D., Finocchiaro, R., Van Kaam, J. T., Marusi, M., & Civati, G. (2020). The effect of selection on casein genetic polymorphisms and haplotypes in Italian Holstein cattle. Italian Journal of Animal Science, 19(1), 833-839. https://doi.org/10.1080/1828051X.2020.1802356 EDN: https://elibrary.ru/MQDAIV

Allais, S., Levéziel, H. H., Payet-Duprat, N., Hocquette, J. F., Lepetit, J., Rousset, S., Denoyelle, C., Bernard-Capel, C., Journaux, L., Bonnot, A., & Renand, G. (2010). The two mutations, Q204X and nt821, of the myostatin gene affect carcass and meat quality in young heterozygous bulls of French beef breeds. Journal of Animal Science, 88(2), 446-454. https://doi.org/10.2527/jas.2009-2385

Yildirim, M., & Sahin, E. (2010). ABCG2 Gene polymorphism in Holstein cows of Turkey. Kafkas Universitesi Veteriner Fakultesi Dergisi, 16(3), 473-476. https://doi.org/10.9775/kvfd.2009.1047


Опубликован
2025-04-30
Как цитировать
Snegin, E., Barkhatov, A., Sychev, A., Snegina, E., Yusupov, S., & Yusupova, A. (2025). Выявление носителей мутантных аллелей крупного рогатого скота на территории Центрально-Чернозёмного региона России с помощью NGS-секвенирования. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 17(2). https://doi.org/10.12731/2658-6649-2025-17-2-1072
Раздел
Биохимия, генетика и молекулярная биология