«Probable acetyltransferase» TTHA1209 бактерии Thermus thermophilus: клонирование гена, структурный и функциональный анализ фермента

  • Timofey A. Kudryashov Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН https://orcid.org/0009-0001-2092-7028
  • Eugene V. Loktyushov Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН https://orcid.org/0000-0003-2028-1789
  • Maria V. Trunilina Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН https://orcid.org/0009-0002-9171-3083
  • Vyacheslav V. Bykov Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН https://orcid.org/0009-0001-3978-7862
  • Andrey S. Sokolov Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН https://orcid.org/0000-0002-7145-251X
  • Yulia S. Lapteva Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН https://orcid.org/0000-0002-6607-9861
Ключевые слова: N-концевые ацетилтрансферазы, GNAT-токсин, микроцин С, антибиотикорезистентность, спермидин, серотонин

Аннотация

Обоснование. За последнюю декаду N-ацетилтрансферазы (AT) бактерий стали объектами интенсивного изучения, поскольку участвуют в биосинтезе/инактивации антибиотиков; образуют систему «токсин-антитоксин»; а статус ацетилирования белков и пептидов оказывает влияние на их вирулентность и патогенность. Ферменты AT обладают низким процентом идентичности аминокислотных последовательностей, что затрудняет их идентификацию и аннотацию в геномах. В этой связи цель данной работы заключалась в структурном и функциональном анализе новой «предполагаемой» ацетилтрансферазы («probable acetyltransferase»), кодируемой открытой рамкой считывания (ОРС) TTHA1209 бактерии T. thermophilus.

Материалы и методы. Структурный анализ фермента проводили методами биоинформатики. Для клонирования ОРС ТTHA1209 использовали методы генной инженерии. Для очистки белка применяли аффинную хроматографию. Проверку активности белка проводили в реакции in vitro ацетилирования модельного белка парвальбумина (ПА). Оценку включения ацетильной группы на N-конец парвальбумина проводили при помощи масс-спектрометрии.

Результаты. Установлено, что TTHA1209 содержит в своей структуре единственный GNAT-домен и обладает характерным для N-концевых AT (NAT) чередованием элементов вторичных структур и трёхмерной укладкой. Исследовано сходство структуры фермента TTHA1209 с белками-ортологами из E.coli. Наибольший процент идентичности TTHA1209 наблюдается с ферментом RimI (27%). Показано, что фермент TTHA1209 ацетилирует парвальбумин, т.е. проявляет специфическую Nα-ацетилтрансферазную активность.

Заключение. Новый фермент TTHA1209 бактерии T. thermophilus на всех уровнях организации проявляет свойства, характерные для NAT, обладает специфической активностью, и может быть аннотирован в геноме как N-концевая ацетилтрансфераза. Полученные результаты создают предпосылки для дальнейшего исследования субстратной специфичности и биохимических свойств новой NAT TTHA1209, что откроет перспективы его использования в биотехнологии для ацетилирования белков и пептидов.

Информация о спонсорстве. Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда, грант № 23-24-00478, https://rscf.ru/project/23-24-00478/.

EDN: PJYJXI

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Timofey A. Kudryashov, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН

младший научный сотрудник Лаборатории новых методов в биологии

Eugene V. Loktyushov, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН

научный сотрудник Лаборатории новых методов в биологии

Maria V. Trunilina, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН

инженер-биотехнолог Лаборатории новых методов в биологии

Vyacheslav V. Bykov, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН

техник Лаборатории новых методов в биологии

Andrey S. Sokolov, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник Лаборатории новых методов в биологии

Yulia S. Lapteva, Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр «Пущинский научный центр биологических исследований» Российской академии наук, Институт биологического приборостроения с опытным производством РАН

кандидат биологических наук, доцент ФИЦ ПНЦБИ РАН, старший научный сотрудник Лаборатории новых методов в биологии

Литература

Bernal-Perez, L. F., & Ryu, Y. (2015). RimJ-Catalyzed Sequence-Specific Protein N-Terminal Acetylation in Escherichia coli. Advances in Bioscience and Biotechnology, 6, 12. https://doi.org/10.4236/abb.2015.63018

Bernal-Perez, L. F., Sahyouni, F., Prokai, L., & Ryu, Y. (2012). RimJ-mediated context-dependent N-terminal acetylation of the recombinant Z-domain protein in Escherichia coli. Mol Biosyst, 8, 1128-1130. https://doi.org/10.1039/c2mb05499j

Bienvenut, W. V., Giglione, C., & Meinnel, T. (2015). Proteome-wide analysis of the amino terminal status of Escherichia coli proteins at the steady-state and upon deformylation inhibition. Proteomics, 15, 2503-2518. https://doi.org/10.1002/pmic.201500027

Burckhardt, R. M., & Escalante-Semerena, J. C. (2020). Small-Molecule Acetylation by GCN5-Related N-Acetyltransferases in Bacteria. Microbiol Mol Biol Rev, 84. https://doi.org/10.1128/MMBR.00090-19 EDN: https://elibrary.ru/ATYYYZ

Chen, W., Biswas, T., Porter, V. R., Tsodikov, O. V., & Garneau-Tsodikova, S. (2011). Unusual regioversatility of acetyltransferase Eis, a cause of drug resistance in XDR-TB. Proc Natl Acad Sci U S A, 108, 9804-9808. https://doi.org/10.1073/pnas.1105379108

Christensen, D. G., Meyer, J. G., Baumgartner, J. T., D’Souza, A. K., Nelson, W. C., Payne, S. H., Kuhn, M. L., Schilling, B., & Wolfe, A. J. (2018). Identification of Novel Protein Lysine Acetyltransferases in Escherichia coli. mBio, 9. https://doi.org/10.1128/mBio.01905-18

Collars, O. A., Jones, B. S., Hu, D. D., Weaver, S. D., Sherman, T. A., Champion, M. M., & Champion, P. A. (2023). An N-acetyltransferase required for ESAT-6 N-terminal acetylation and virulence in Mycobacterium marinum. mBio, 14, e0098723. https://doi.org/10.1128/mbio.00987-23 EDN: https://elibrary.ru/TZOYBZ

D’Accolti, M., Bellotti, D., Dzien, E., Leonetti, C., Leveraro, S., Albanese, V., Marzola, E., Guerrini, R., Caselli, E., Rowinska-Zyrek, M., & Remelli, M. (2023). Impact of C- and N-terminal protection on the stability, metal chelation and antimicrobial properties of calcitermin. Sci Rep, 13, 18228. https://doi.org/10.1038/s41598-023-45437-0 EDN: https://elibrary.ru/MTBIVO

Dash, A., & Modak, R. (2021). Protein Acetyltransferases Mediate Bacterial Adaptation to a Diverse Environment. J Bacteriol, 203, e0023121. https://doi.org/10.1128/JB.00231-21 EDN: https://elibrary.ru/DSNGDE

Deng, S., & Marmorstein, R. (2021). Protein N-Terminal Acetylation: Structural Basis, Mechanism, Versatility, and Regulation. Trends Biochem Sci, 46, 15-27. https://doi.org/10.1016/j.tibs.2020.08.005 EDN: https://elibrary.ru/HVAAQD

Esipov, R. S., Makarov, D. A., Stepanenko, V. N., & Miroshnikov, A. I. (2016). Development of the intein-mediated method for production of recombinant thymosin beta4 from the acetylated in vivo fusion protein. J Biotechnol, 228, 73-81. https://doi.org/10.1016/j.jbiotec.2016.02.021 EDN: https://elibrary.ru/WWJBLJ

Favrot, L., Blanchard, J. S., & Vergnolle, O. (2016). Bacterial GCN5-Related N-Acetyltransferases: From Resistance to Regulation. Biochemistry, 23, 989-1002. https://doi.org/10.1021/acs.biochem.5b01269 EDN: https://elibrary.ru/WVMSQP

Huang, E., & Yousef, A. E. (2015). Biosynthesis of paenibacillin, a lantibiotic with N-terminal acetylation, by Paenibacillus polymyxa. Microbiol Res, 181, 15-21. https://doi.org/10.1016/j.micres.2015.08.001 EDN: https://elibrary.ru/YECKUW

Isono, K., & Isono, S. (1980). Ribosomal protein modification in Escherichia coli. II. Studies of a mutant lacking the N-terminal acetylation of protein S18. Mol. Gen. Genet, 177, 645-651. https://doi.org/10.1007/bf00272675 EDN: https://elibrary.ru/IFVGVY

Kazakov, T., Kuznedelov, K., Semenova, E., Mukhamedyarov, D., Datsenko, K. A., Metlitskaya, A., Vondenhoff, G. H., Tikhonov, A., Agarwal, V., Nair, S., Van Aerschot, A., & Severinov, K. (2014). The RimL transacetylase provides resistance to translation inhibitor microcin C. J Bacteriology, 196, 3377-3385. https://doi.org/10.1128/JB.01584-14 EDN: https://elibrary.ru/UEYGQT

Kudryashov, T. A., Trunilina, M. V., Bykov, V. V., Boldaevsky, I. S., Sokolov, A. S., & Lapteva, Y. S. (2023). Development of an algorithm for N-terminal acetyltransferases identification and verification of their functional activity. JOURNAL BIOMED, 19, 43-46. https://doi.org/10.33647/2713-0428-19-3 EDN: https://elibrary.ru/BJNZTF

Lapteva, Y. S., Vologzhannikova, A. A., Sokolov, A. S., Ismailov, R. G., Uversky, V. N., & Permyakov, S. E. (2021). In Vitro N-Terminal Acetylation of Bacterially Expressed Parvalbumins by N-Terminal Acetyltransferases from Escherichia coli. Appl Biochem Biotechnol. https://doi.org/10.1007/s12010-020-03324-8 EDN: https://elibrary.ru/CZOUMS

Le, V. T. B., Tsimbalyuk, S., Lim, E. Q., Solis, A., Gawat, D., Boeck, P., Lim, E. Q., Renolo, R., Forwood, J. K., & Kuhn, M. L. (2021). The Vibrio cholerae SpeG Spermidine/Spermine N-Acetyltransferase Allosteric Loop and beta6-beta7 Structural Elements Are Critical for Kinetic Activity. Front Mol Biosci, 8, 645768. https://doi.org/10.3389/fmolb.2021.645768 EDN: https://elibrary.ru/HFGLJF

Lee, K., & Back, K. (2023). Escherichia coli RimI Encodes Serotonin N-Acetyltransferase Activity and Its Overexpression Leads to Enhanced Growth and Melatonin Biosynthesis. Biomolecules, 13, 908. https://doi.org/10.3390/biom13060908 EDN: https://elibrary.ru/KUBTTZ

Li, D., Yang, Y., Li, R., Huang, L., Wang, Z., Deng, Q., & Dong, S. (2021). N-terminal acetylation of antimicrobial peptide L163 improves its stability against protease degradation. J Pept Sci, 27, e3337. https://doi.org/10.1002/psc.3337 EDN: https://elibrary.ru/HPPSFL

Miao, L., Fang, H., Li, Y., & Chen, H. (2007). Studies of the in vitro Nalpha-acetyltransferase activities of E. coli RimL protein. Biochem Biophys Res Commun, 357, 641-647. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2007.03.171

Miasaki, K. M. F., Wilke, N., Neto, J. R., & Alvares, D. S. (2020). N-terminal acetylation of a mastoparan-like peptide enhances PE/PG segregation in model membranes. Chem Phys Lipids, 232, 104975. https://doi.org/10.1016/j.chemphyslip.2020.104975 EDN: https://elibrary.ru/TSXNWP

Nesterchuk, M. V., Sergiev, P. V., & Dontsova, O. A. (2011). Posttranslational Modifications of Ribosomal Proteins in Escherichia coli. Acta Naturae, 3, 22-33. https://doi.org/10.32607/20758251-2011-3-2-22-33 EDN: https://elibrary.ru/OXKWAZ

Pace, C. N., Vajdos, F., Fee, L., Grimsley, G., & Gray, T. (1995). How to measure and predict the molar absorption coefficient of a protein. Protein Sci., 4, 2411-2423. https://doi.org/10.1002/pro.5560041120 EDN: https://elibrary.ru/XZNIPR

Pal, M., Yadav, V. K., Pal, P., Agarwal, N., & Rao, A. (2023). The physiological effect of rimI/rimJ silencing by CRISPR interference in Mycobacterium smegmatis mc(2)155. Arch Microbiol, 205, 211. https://doi.org/10.1007/s00203-023-03561-5 EDN: https://elibrary.ru/WNBFRF

Pathak, D., Bhat, A. H., Sapehia, V., Rai, J., & Rao, A. (2016). Biochemical evidence for relaxed substrate specificity of Na-acetyltransferase (Rv3420c/rimI) of Mycobacterium tuberculosis. Scientific reports, 6, 12.

Peri, S., Steen, H., & Pandey, A. (2001). GPMAW-a software tool for analyzing proteins and peptides. Trends Biochem Sci, 26, 687-689. https://doi.org/10.1016/s0968-0004(01)01954-5 EDN: https://elibrary.ru/AQGWYS

Permyakov, S. E., Vologzhannikova, A. A., Emelyanenko, V. I., Knyazeva, E. L., Kazakov, A. S., Lapteva, Y. S., Permyakova, M. E., Zhadan, A. P., & Permyakov, E. A. (2012). The impact of alpha-N-acetylation on structural and functional status of parvalbumin. Cell Calcium, 52, 366-376. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2012.06.002 EDN: https://elibrary.ru/SOHVBX

Pletnev, P. I., Shulenina, O., Evfratov, S., Treshin, V., Subach, M. F., Serebryakova, M. V., Osterman, I. A., Paleskava, A., Bogdanov, A. A., Dontsova, O. A., Konevega, A. L., & Sergiev, P. V. (2022). Ribosomal protein S18 acetyltransferase RimI is responsible for the acetylation of elongation factor Tu. J Biol Chem, 298, 101914. https://doi.org/10.1016/j.jbc.2022.101914 EDN: https://elibrary.ru/PJSPCV

Ren, Y., Yao, X., Dai, H., Li, S., Fang, H., Chen, H., & Zhou, C. (2011). Production of Na-acetylated thymosin a1 in Escherichia coli. Microbial Cell Factories, 10, 2-8. https://doi.org/10.1186/1475-2859-10-26 EDN: https://elibrary.ru/ONECBZ

Roy-Chaudhuri, B., Kirthi, N., Kelley, T., & Culver, G. M. (2008). Suppression of a cold-sensitive mutation in ribosomal protein S5 reveals a role for RimJ in ribosome biogenesis. Mol Microbiol, 68, 1547-1559. https://doi.org/10.1111/j.1365-2958.2008.06252.x

Schmidt, A., Kochanowski, K., Vedelaar, S., Ahrne, E., Volkmer, B., Callipo, L., Knoops, K., Bauer, M., Aebersold, R., & Heinemann, M. (2016). The quantitative and condition-dependent Escherichia coli proteome. Nat Biotechnol, 34, 104-110. https://doi.org/10.1038/nbt.3418 EDN: https://elibrary.ru/BUYYEB

Vetting, M. W., Bareich, D. C., Yu, M., & Blanchard, J. S. (2008). Crystal structure of RimI from Salmonella typhimurium LT2, the GNAT responsible for N(alpha)-acetylation of ribosomal protein S18. Protein Sci, 17, 1781-1790. https://doi.org/10.1110/ps.035899.108

Vetting, M. W., Carvalho, L. P. S., Roderick, S. L., & Blanchard, J. S. (2005). A Novel Dimeric Structure of the RimL Nα-acetyltransferase from Salmonella typhimurium. J Biol Chem, 280, 22108-22114. https://doi.org/10.1074/jbc.M502401200 EDN: https://elibrary.ru/MINOZH

Vetting, M. W., Carvalho, L. P. S., Yu, M., Hegde, S. S., Magnet, S., Roderick, S. L., & Blanchard, J. S. (2005). Structure and functions of the GNAT superfamily of acetyltransferases. Archives of Biochemistry and Biophysics, 433, 212-226. https://doi.org/10.1016/j.abb.2004.09.003

White-Ziegler, C. A., Black, A. M., Eliades, S. H., Young, S., & Porter, K. (2002). The N-acetyltransferase RimJ responds to environmental stimuli to repress pap fimbrial transcription in Escherichia coli. J Bacteriol, 184, 4334-4342. https://doi.org/10.1128/JB.184.16.4334-4342.2002

White-Ziegler, C. A., & Low, D. A. (1992). Thermoregulation of the pap operon: evidence for the involvement of RimJ, the N-terminal acetylase of ribosomal protein S5. J Bacteriol, 174, 7003-7012. https://doi.org/10.1128/jb.174.21.7003-7012.1992

Yoshikawa, A., Isono, S., Sheback, A., & Isono, K. (1987). Cloning and nucleotide sequencing of the genes rimI and rimJ which encode enzymes acetylating ribosomal proteins S18 and S5 of Escherichia coli K12. Mol. Gen. Genet., 209, 481-488. https://doi.org/10.1007/BF00331153 EDN: https://elibrary.ru/SZGZVG


Опубликован
2025-04-30
Как цитировать
Kudryashov, T., Loktyushov, E., Trunilina, M., Bykov, V., Sokolov, A., & Lapteva, Y. (2025). «Probable acetyltransferase» TTHA1209 бактерии Thermus thermophilus: клонирование гена, структурный и функциональный анализ фермента. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 17(2). https://doi.org/10.12731/2658-6649-2025-17-2-1121
Раздел
Биохимия, генетика и молекулярная биология