Метаболомный профиль сыворотки крови цыплят-бройлеров кросса Arbor Acres: ассоциации с составом кишечного микробиома и показателями продуктивности
Аннотация
Обоснование. Комплексный анализ метаболических параметров сыворотки крови (метаболома) становится востребованным инструментом оценки физиологического состояния организма сельскохозяйственной птицы.
Целью исследования является характеристика наиболее значимых метаболитов крови цыплят-бройлеров кросса Arbor Acress с определением их ассоциаций с составом кишечного микробиома и показателями продуктивности.
Материалы и методы. В исследование включены 28 групп цыплят-бройлеров, находившихся на базовом рационе, а также получавших различные кормовые добавки (пробиотики, антибиотики, малые молекулы растительного происхождения). Метаболомный профиль сывороток крови исследован с использованием коммерческих наборов для ветеринарии «ДиаВетТест» (ДИАКОН-ДС, Россия). Состав кишечного микробиома оценен на основе высокопроизводительного секвенирования на платформе MiSeq (Illumina Inc., США).
Результаты. Анализ ассоциаций сывороточных маркеров и морфологических показателей цыплят-бройлеров позволил зафиксировать четыре значимые взаимосвязи: положительную в паре «креатинин – мясная продуктивность» и отрицательные в парах «мочевина – масса несъедобной части тушки», «глюкоза – масса печени» и «холестерин – убойный выход». Сопоставление характеристик метаболома и состава кишечного микробиома показало множественные ассоциации, связывающие бактериальное сообщество с сывороточными уровнями малонового диальдегида, билирубина, мочевой кислоты и мочевины.
Заключение. Полученные результаты развивают представления о метаболических индикаторах, пригодных для мониторинга эффективности режимов содержания и кормления цыплят-бройлеров, а также впервые характеризуют мочевину, как маркер продуктивности, уровень которого может контролироваться через воздействие на кишечный микробиом сельскохозяйственной птицы.
Скачивания
Литература
Андреева, Л. И., Кожемякин, Л. А., & Кишкун, А. А. (1988). Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой. Лабораторное дело, (11), 41–43. EDN: https://elibrary.ru/SKGPQJ
Боголюбова, Н. В., Некрасов, Р. В., Зеленченкова, А. А., Рыков, Р. А., Колесник, Н. С., Волкова, Н. А., & Ветох, А. Н. (2022). Биохимический профиль организма кур разного направления продуктивности. Ветеринария и кормление, (6), 11–15. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2022-6-3. EDN: https://elibrary.ru/BHDHWV
Вертипрахов, В. Г., Ксенофонтов, Д. А., Колесник, Е. А., & Овчинникова, Н. В. (2022). Морфо биохимические исследования крови у сельскохозяйственной птицы [Учебное пособие]. РГАУ МСХА имени К. А. Тимирязева. ISBN: 978 5 9675 1938 3. EDN: https://elibrary.ru/RIUBDQ
Дускаев, Г. К., Рахматуллин, Ш. Г., Косян, Д. Б., Русакова, Е. А., Кван, О. В., & Левахин, Г. И. (2022). Влияние совместного использования гамма окталактона и хлортетрациклина в рационе бройлеров: живая масса, эффективность использования корма и микробиом слепого кишечника. Аграрная наука, (9), 47–53. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-362-9-47-53. EDN: https://elibrary.ru/FSEANC
Дускаев, Г. К., Лазебник, К. С., & Климова, Т. А. (2022). Оценка микробного разнообразия слепого отдела кишечника цыплят бройлеров при введении кумарина и кормового антибиотика в рацион. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство, 17(4), 555–566. https://doi.org/10.22363/2312-797X-2022-17-4-555-566. EDN: https://elibrary.ru/FUHJBX
Дускаев, Г. К., Русакова, Е. А., & Дерябин, Д. Г. (2022). Использование гамма октанолактона в рационе бройлеров: микробиом кишечника. Международный вестник ветеринарии, (4), 152–158. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.4.152. EDN: https://elibrary.ru/XGADAX
Дускаев, Г. К., Власенко, Л. В., Косян, Д. Б., & Курилкина, М. Я. (2023). Влияние малых молекул растительного происхождения на микробное разнообразие слепого отдела кишечника цыплят бройлеров. Птицеводство, (4), 46–51. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2023-72-4-46-51. EDN: https://elibrary.ru/SASHWF
Еримбетов, К. Т., Обвинцева, О. В., & Михайлов, В. В. (2018). Особенности метаболизма и формирования мясной продуктивности у свиней разных генотипов. Проблемы биологии продуктивных животных, (1), 51–63. https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2018.1.51-63. EDN: https://elibrary.ru/YRPEPF
Загарин, А. Ю. (2024). Характеристика корреляционных связей между биохимическими показателями крови и морфологическими особенностями цыплят бройлеров. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, (4), 140–153. https://doi.org/10.26897/0021-342X-2024-4-140-153. EDN: https://elibrary.ru/IXDVXC
Кулебякин, К. Ю., Акопян, Ж. А., Кочегура, Т. Н., & Пеньков, Д. Н. (2016). Механизмы транскрипционного контроля обмена глюкозы в печени. Сахарный диабет, 19(3), 190–198. https://doi.org/10.14341/DM2003436-40. EDN: https://elibrary.ru/WKBQLJ
Aviagen. Нормативные показатели бройлерного поголовья Arbor Acres Plus. Получено из https://fermer.ru/files/v2/forum/152289/17a-aa-broiler-po.pdf
Пикулик, А. А., Бабичева, И. А., & Сенько, А. Я. (2018). Влияние сочетанного применения тетралактобактерина и йодида калия на концентрацию общего белка и мочевины в сыворотке крови цыплят бройлеров. Известия Оренбургского государственного аграрного университета, (5), 271–273. EDN: https://elibrary.ru/YNDPZZ
Стандартинформ. (2010). Принципы надлежащей лабораторной практики.
Риган, В. Д., Сандерс, Т. Г., & Деникола, Д. Б. (2008). Атлас ветеринарной гематологии (Е. Махиянова, Пер.). Аквариум Принт. ISBN: 978 5 98435 930 6. EDN: https://elibrary.ru/QKZJZJ
Салеева, И. П., Лысенко, В. П., Шоль, В. Г., и др. (2015). Методика проведения исследований по технологии производства яиц и мяса птицы (В. С. Лукашенко & А. Ш. Кавтарашвили, Ред.). ВНИТИП. ISBN: 978 5 98020 154 8
Aviagen. (2022). Спецификации бройлерных рационов корма Arbor Acres. Получено из https://aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/RUS_TechDocs/AA_BroilerNutritionSpecifications2022_RU.pdf
Arzour Lakehal, N., & Boudebza, A. (2021). Biochemical reference intervals in broiler chickens according to age and strain. Agricultural Science and Technology, 13(4), 357–364. https://doi.org/10.15547/ast.2021.04.058. EDN: https://elibrary.ru/WAELGP
Beauclercq, S., Nadal Desbarats, L., Hennequet Antier, C., Collin, A., Tesseraud, S., Bourin, M., Le Bihan Duval, E., & Berri, C. (2016). Serum and muscle metabolomics for the prediction of ultimate pH, a key factor for chicken meat quality. Journal of Proteome Research, 15(4), 1168–1178. https://doi.org/10.1021/acs.jproteome.5b01050
Chen, Y., Wang, J., Yu, L., Xu, T., & Zhu, N. (2020). Microbiota and metabolome responses in the cecum and serum of broiler chickens fed with plant essential oils or virginiamycin. Scientific Reports, 10. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60135-x. EDN: https://elibrary.ru/WYYZXP
Chowdhury, S. D., Roy, C. R., & Sarker, A. K. (1996). Urea in poultry nutrition — Review. Asian Australasian Journal of Animal Sciences, 9(3), 241–245. https://doi.org/10.5713/ajas.1996.241
Cox, T. O., Lundgren, P., Nath, K., & Thaiss, C. A. (2022). Metabolic control by the microbiome. Genome Medicine, 14(80). https://doi.org/10.1186/s13073-022-01092-0. EDN: https://elibrary.ru/PUTJNY
Das, S., & Aminul Islam, M. (2023). Comparative growth, meat yield and blood lipid profiles of Arbor Acres, Cobb 500 and Lohmann broiler strains. International Journal of Agriculture Environment and Bioresearch, 8(3), 55–63. https://doi.org/10.35410/IJAEB.2023.5828. EDN: https://elibrary.ru/ZRZQDP
Deryabin, D. G., Kosyan, D. B., Inchagova, K. S., & Duskaev, G. K. (2023). Plant derived quorum sensing inhibitors (quercetin, vanillin and umbelliferon) modulate cecal microbiome, reduces inflammation and affect production efficiency in broiler chickens. Microorganisms, 11, 1326. https://doi.org/10.3390/microorganisms11051326. EDN: https://elibrary.ru/DTQURZ
Duskaev, G., Kvan, O., Kosyan, D., Rakhmatullin, S., & Levakhin, G. (2021). Coumarin derivative and Bacillus cereus change live weight and cecal ecology in broilers. AIMS Agriculture and Food, 6(1), 360–380. https://doi.org/10.3934/agrfood.2021022. EDN: https://elibrary.ru/NBMBIY
Fonknechten, N., Chaussonnerie, S., Tricot, S., Lajus, A., Andreesen, J. R., Perchat, N., Pelletier, E., Gouyvenoux, M., Barbe, V., Salanoubat, M., Le Paslier, D., Weissenbach, J., Cohen, G. N., & Kreimeyer, A. (2010). Clostridium sticklandii, a specialist in amino acid degradation: revisiting its metabolism through its genome sequence. BMC Genomics, 11(555). https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-555. EDN: https://elibrary.ru/NYOTGD
Friedrichs, K. R., Harr, K. E., Freeman, K. P., Szladovits, B., Walton, R. M., Barnhart, K. F., & Blanco Chavez, J. (2012). ASVCP reference interval guidelines: determination of de novo reference intervals in veterinary species and other related topics. Veterinary Clinical Pathology, 41(4), 441–453. https://doi.org/10.1111/vcp.12006
Fujisaka, S., Watanabe, Y., & Tobe, K. (2023). The gut microbiome: A core regulator of metabolism. Journal of Endocrinology, 256(3), e220111. https://doi.org/10.1530/JOE-22-0111. EDN: https://elibrary.ru/FCNYKY
Gerritsen, J., Hornung, B., Ritari, J., Paulin, L., Rijkers, G., Schaap, P. J., De Vos, W. M., & Smidt, H. (2019). A comparative and functional genomics analysis of the genus Romboutsia provides insight into adaptation to an intestinal lifestyle. bioRxiv. https://doi.org/10.1101/845511
Hall, B., Levy, S., Dufault Thompson, K., Arp, G., Zhong, A., Ndjite, G. M., Weiss, A., Braccia, D., Jenkins, C., Grant, M. R., Abeysinghe, S., Yang, Y., Jermain, M. D., Wu, C. H., Ma, B., & Jiang, X. (2024). BilR is a gut microbial enzyme that reduces bilirubin to urobilinogen. Nature Microbiology, 9, 173–184. https://doi.org/10.1038/s41564-023-01549-x. EDN: https://elibrary.ru/UFYZMZ
Hu, W., He, Z., Du, L., Zhang, L., Li, J., Ma, Y., & Bi, S. (2023). Biomarkers of oxidative stress in broiler chickens attacked by lipopolysaccharide: A systematic review and meta analysis. Ecotoxicology and Environmental Safety, 266, 115606. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2023.115606. EDN: https://elibrary.ru/QZXKYJ
Indriani, S., Srisakultiew, N., Yuliana, N. D., Yongsawatdigul, J., Benjakul, S., & Pongsetkul, J. (2024). Metabolomic profiles and compositional differences involved in flavor characteristics of raw breast meat from slow and fast growing chickens in Thailand. Poultry Science, 103(11), 104230. https://doi.org/10.1016/j.psj.2024.104230. EDN: https://elibrary.ru/IKXEXW
Karasawa, Y. (1989). Ammonia production from uric acid, urea, and amino acids and its absorption from the ceca of the cockerel. Journal of Experimental Zoology Supplement, 75–80. https://doi.org/10.1002/jez.1402520513
Karisa, B. K., Thomson, J., Wang, Z., Li, C., Montanholi, Y. R., Miller, S. P., Moore, S. S., & Plastow, G. S. (2014). Plasma metabolites associated with residual feed intake and other productivity performance traits in beef cattle. Livestock Science, 165, 200–211. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2014.03.002
Kırbaş, A., Kaman, R., Merhan, O., Bozukluhan, K., Değirmençay, S., & Sertaç, M. (2021). Evaluation of acute phase response and oxidative damage in sheep naturally infected with Streptococcus Pluranimalium using haptoglobin, nitric oxide, and malondialdehyde levels. Fırat University Veterinary Journal of Health Sciences, 35(3), 145–150.
Krasnodebska Depta, A., & Koncicki, A. (2000). Physiological values of selected serum biochemical indices in broiler chickens. Medycyna Weterynaryjna, 56(7), 456–460.
Lee, D. J. (1977). Urease activity in the digestive tract of the chick and its role in the utilisation of urea as a source of non amino nitrogen. British Poultry Science, 18(4), 449–458. https://doi.org/10.1080/00071667708416385
Li, J., Akanno, E. C., Valente, T. S., Abo Ismail, M., Karisa, B. K., Wang, Z., & Plastow, G. S. (2020). Genomic heritability and genome wide association studies of plasma metabolites in crossbred beef cattle. Frontiers in Genetics, 11. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.538600. EDN: https://elibrary.ru/CNXOGS
Lichtenberg, S., Trifonova, O. P., Maslov, D. L., Balashova, E. E., & Lokhov, P. G. (2021). Metabolomic laboratory developed tests: current status and perspectives. Metabolites, 11(7), 423. https://doi.org/10.3390/metabo11070423. EDN: https://elibrary.ru/RETLGK
Lin, T. C., Soorneedi, A., Guan, Y., Tang, Y., Shi, E., Moore, M. D., & Liu, Z. (2023). Turicibacter fermentation enhances the inhibitory effects of Antrodia camphorata supplementation on tumorigenic serotonin and Wnt pathways and promotes ROS mediated apoptosis of Caco 2 cells. Frontiers in Pharmacology, 14, 1203087. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1203087. EDN: https://elibrary.ru/WSUGZQ
Liu, T., Ruan, S., Mo, Q., Zhao, M., Wang, J., Ye, Z., Chen, L., & Feng, F. (2023). Integrated serum metabolome and gut microbiome to decipher chicken amino acid improvements induced by medium chain monoglycerides. Metabolites, 13(2), 208. https://doi.org/10.3390/metabo13020208. EDN: https://elibrary.ru/IWIRMD
Lu, G., Li, Y., Mao, K., Zang, Y., Zhao, X., Qiu, Q., Qu, M., & Ouyang, K. (2022). Effects of rumen protected creatine pyruvate on meat quality, hepatic gluconeogenesis, and muscle energy metabolism of long distance transported beef cattle. Frontiers in Animal Science, 3, 904503. https://doi.org/10.3389/fanim.2022.904503. EDN: https://elibrary.ru/ZASGRZ
Marciano, D. P., & Snyder, M. P. (2019). Personalized metabolomics. В: D’Alessandro, A. (Ed.), High Throughput Metabolomics (Methods in Molecular Biology, Vol. 1978). Humana. https://doi.org/10.1007/978 1 4939 9236 2_27
Matthies, C., Evers, S., Ludwig, W., & Schink, B. (2000). Anaerovorax odorimutans gen. nov., sp. nov., a putrescine fermenting, strictly anaerobic bacterium. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 50, 1591–1594. https://doi.org/10.1099/00207713 50 4 1591
Miao, X., Wu, T., Pan, H., Zhang, Y., Liu, J., Fan, Y., Du, L., Gong, Y., Li, L., Huang, T., & Ning, Z. (2024). Integrative analysis of the ovarian metabolome and transcriptome of the Yaoshan chicken and its improved hybrids. Frontiers in Genetics, 15, 1416283. https://doi.org/10.3389/fgene.2024.1416283. EDN: https://elibrary.ru/DUMSNG
Nagalakshmi, D., Sastry, V. R., Katiyar, R. C., Agrawal, D. K., & Verma, S. V. (1999). Performance of broiler chicks fed on diets containing urea ammoniated neem (Azadirachta indica) kernel cake. British Poultry Science, 40(1), 77–83. https://doi.org/10.1080/00071669987863
Noecker, C., Sanchez, J., Bisanz, J. E., Escalante, V., Alexander, M., Trepka, K., Heinken, A., Liu, Y., Dodd, D., Thiele, I., DeFelice, B. C., & Turnbaugh, P. J. (2023). Systems biology elucidates the distinctive metabolic niche filled by the human gut microbe Eggerthella lenta. PLoS Biology, 21(5), e3002125. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3002125. EDN: https://elibrary.ru/AFXFVY
Qaid, M. M., Al Mufarrej, S. I., Azzam, M. M., Al Garadi, M. A., Albaadani, H. H., Alhidary, I. A., & Aljumaah, R. S. (2021). Growth performance, serum biochemical indices, duodenal histomorphology, and cecal microbiota of broiler chickens fed on diets supplemented with cinnamon bark powder at prestarter and starter phases. Animals, 11(1), 94. https://doi.org/10.3390/ani11010094. EDN: https://elibrary.ru/AZMFVB
Shajahmetova, E., Deryabin, D., & Duskaev, G. (2021). Gamma lactone and vanillic acid change the microbiome of broiler blind appendage. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 35(S1), S74. EDN: https://elibrary.ru/NMEVGQ
Tian, J., Zhu, X., Wu, H., Wang, Y., & Hu, X. (2023). Serum metabolic profile and metabolome genome wide association study in chicken. Journal of Animal Science and Biotechnology, 14(69). https://doi.org/10.1186/s40104 023 00868 7. EDN: https://elibrary.ru/RTBIPI
Vítek, L., & Tiribelli, C. (2025). Gut microbiota and bilirubin metabolism: unveiling new pathways in health and disease. Trends in Molecular Medicine. https://doi.org/10.1016/j.molmed.2024.12.007. EDN: https://elibrary.ru/BIATBM
Wu, M., Zuo, S., Maiorano, G., Kosobucki, P., & Stadnicka, K. (2022). How to employ metabolomic analysis to research on functions of prebiotics and probiotics in poultry gut health? Frontiers in Microbiology, 13, 1040434. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1040434. EDN: https://elibrary.ru/BPXNOX
Wuthier, P. R., & Stratton, P. O. (1957). The creatinine level of blood serum as an indicator of carcass composition. Journal of Animal Science, 16(4), 961–966. https://doi.org/10.2527/jas1957.164961x
Yang, S., Yang, Y., Long, X., Li, H., Zhang, F., & Wang, Z. (2023). Integrated analysis of the effects of cecal microbiota and serum metabolome on market weights of Chinese native chickens. Animals, 13(19), 3034. https://doi.org/10.3390/ani13193034. EDN: https://elibrary.ru/BPLPAE
References
Andreeva, L. I., Kozhemyakin, L. A., & Kishkun, A. A. (1988). Modification of the method for determining lipid peroxides in the thiobarbituric acid test. Laboratornoe delo, (11), 41–43. EDN: https://elibrary.ru/SKGPQJ
Bogolyubova, N. V., Nekrasov, R. V., Zelenchenkova, A. A., Rykov, R. A., Kolesnik, N. S., Volkova, N. A., & Vetokh, A. N. (2022). Biochemical profile of the body of chickens of different productivity directions. Veterinariya i kormlenie, (6), 11–15. https://doi.org/10.30917/ATT-VK-1814-9588-2022-6-3. EDN: https://elibrary.ru/BHDHWV
Vertiprakhov, V. G., Ksenofontov, D. A., Kolesnik, E. A., & Ovchinnikova, N. V. (2022). Morpho-biochemical blood studies in agricultural poultry [Textbook]. Russian State Agrarian University — Moscow Timiryazev Agricultural Academy. ISBN: 978 5 9675 1938 3. EDN: https://elibrary.ru/RIUBDQ
Duskaev, G. K., Rakhmatullin, Sh. G., Kosyan, D. B., Rusakova, E. A., Kvan, O. V., & Levakhin, G. I. (2022). Effect of combined use of gamma-octalactone and chlortetracycline in the broiler diet: Live weight, feed utilization efficiency, and cecum microbiome. Agrarnaya nauka, (9), 47–53. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2022-362-9-47-53. EDN: https://elibrary.ru/FSEANC
Duskaev, G. K., Lazebnik, K. S., & Klimova, T. A. (2022). Assessment of microbial diversity in the cecum of broiler chickens when introducing coumarin and a feed antibiotic into the diet. Vestnik of the Peoples’ Friendship University of Russia. Series: Agronomy and Animal Husbandry, 17(4), 555–566. https://doi.org/10.22363/2312-797X-2022-17-4-555-566. EDN: https://elibrary.ru/FUHJBX
Duskaev, G. K., Rusakova, E. A., & Deryabin, D. G. (2022). Use of gamma-octanolactone in the broiler diet: Intestinal microbiome. Mezhdunarodnyy vestnik veterinarii, (4), 152–158. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.4.152. EDN: https://elibrary.ru/XGADAX
Duskaev, G. K., Vlasenko, L. V., Kosyan, D. B., & Kurilkina, M. Ya. (2023). Effect of small plant-derived molecules on the microbial diversity of the cecum in broiler chickens. Ptitsevodstvo, (4), 46–51. https://doi.org/10.33845/0033-3239-2023-72-4-46-51. EDN: https://elibrary.ru/SASHWF
Erimbetov, K. T., Obvintseva, O. V., & Mikhailov, V. V. (2018). Features of metabolism and formation of meat productivity in pigs of different genotypes. Problemy biologii produktivnykh zhivotnykh, (1), 51–63. https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2018.1.51-63. EDN: https://elibrary.ru/YRPEPF
Zagarin, A. Yu. (2024). Characteristics of correlation relationships between biochemical blood parameters and morphological features of broiler chickens. Izvestiya of the Timiryazev Agricultural Academy, (4), 140–153. https://doi.org/10.26897/0021-342X-2024-4-140-153. EDN: https://elibrary.ru/IXDVXC
Kulebyakin, K. Yu., Akopyan, Zh. A., Kochegura, T. N., & Penkov, D. N. (2016). Mechanisms of transcriptional control of glucose metabolism in the liver. Sakharnyy diabet, 19(3), 190–198. https://doi.org/10.14341/DM2003436-40. EDN: https://elibrary.ru/WKBQLJ
Aviagen. Normative indicators for Arbor Acres Plus broiler stock. Retrieved from https://fermer.ru/files/v2/forum/152289/17a-aa-broiler-po.pdf
Pikulik, A. A., Babicheva, I. A., & Senko, A. Ya. (2018). Effect of the combined use of tetralactobacterin and potassium iodide on the concentration of total protein and urea in the blood serum of broiler chickens. Izvestiya of the Orenburg State Agrarian University, (5), 271–273. EDN: https://elibrary.ru/YNDPZZ
Standartinform. (2010). Principles of good laboratory practice.
Regan, V. D., Sanders, T. G., & Denicola, D. B. (2008). Atlas of veterinary hematology (E. Makhiyanova, Trans.). Aquarium Print. ISBN: 978 5 98435 930 6. EDN: https://elibrary.ru/QKZJZJ
Saleeva, I. P., Lysenko, V. P., Shol, V. G., et al. (2015). Methodology for conducting research on the technology of egg and poultry meat production (V. S. Lukashenko & A. Sh. Kavtarashvili, Eds.). All Russian Research and Technological Institute of Poultry. ISBN: 978 5 98020 154 8.
Aviagen. (2022). Arbor Acres broiler feed ration specifications. Retrieved from https://aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/RUS_TechDocs/AA_BroilerNutritionSpecifications2022_RU.pdf
Arzour Lakehal, N., & Boudebza, A. (2021). Biochemical reference intervals in broiler chickens according to age and strain. Agricultural Science and Technology, 13(4), 357–364. https://doi.org/10.15547/ast.2021.04.058. EDN: https://elibrary.ru/WAELGP
Beauclercq, S., Nadal Desbarats, L., Hennequet Antier, C., Collin, A., Tesseraud, S., Bourin, M., Le Bihan Duval, E., & Berri, C. (2016). Serum and muscle metabolomics for the prediction of ultimate pH, a key factor for chicken meat quality. Journal of Proteome Research, 15(4), 1168–1178. https://doi.org/10.1021/acs.jproteome.5b01050
Chen, Y., Wang, J., Yu, L., Xu, T., & Zhu, N. (2020). Microbiota and metabolome responses in the cecum and serum of broiler chickens fed with plant essential oils or virginiamycin. Scientific Reports, 10. https://doi.org/10.1038/s41598-020-60135-x. EDN: https://elibrary.ru/WYYZXP
Chowdhury, S. D., Roy, C. R., & Sarker, A. K. (1996). Urea in poultry nutrition — Review. Asian Australasian Journal of Animal Sciences, 9(3), 241–245. https://doi.org/10.5713/ajas.1996.241
Cox, T. O., Lundgren, P., Nath, K., & Thaiss, C. A. (2022). Metabolic control by the microbiome. Genome Medicine, 14(80). https://doi.org/10.1186/s13073-022-01092-0. EDN: https://elibrary.ru/PUTJNY
Das, S., & Aminul Islam, M. (2023). Comparative growth, meat yield and blood lipid profiles of Arbor Acres, Cobb 500 and Lohmann broiler strains. International Journal of Agriculture Environment and Bioresearch, 8(3), 55–63. https://doi.org/10.35410/IJAEB.2023.5828. EDN: https://elibrary.ru/ZRZQDP
Deryabin, D. G., Kosyan, D. B., Inchagova, K. S., & Duskaev, G. K. (2023). Plant derived quorum sensing inhibitors (quercetin, vanillin and umbelliferon) modulate cecal microbiome, reduces inflammation and affect production efficiency in broiler chickens. Microorganisms, 11, 1326. https://doi.org/10.3390/microorganisms11051326. EDN: https://elibrary.ru/DTQURZ
Duskaev, G., Kvan, O., Kosyan, D., Rakhmatullin, S., & Levakhin, G. (2021). Coumarin derivative and Bacillus cereus change live weight and cecal ecology in broilers. AIMS Agriculture and Food, 6(1), 360–380. https://doi.org/10.3934/agrfood.2021022. EDN: https://elibrary.ru/NBMBIY
Fonknechten, N., Chaussonnerie, S., Tricot, S., Lajus, A., Andreesen, J. R., Perchat, N., Pelletier, E., Gouyvenoux, M., Barbe, V., Salanoubat, M., Le Paslier, D., Weissenbach, J., Cohen, G. N., & Kreimeyer, A. (2010). Clostridium sticklandii, a specialist in amino acid degradation: revisiting its metabolism through its genome sequence. BMC Genomics, 11(555). https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-555. EDN: https://elibrary.ru/NYOTGD
Friedrichs, K. R., Harr, K. E., Freeman, K. P., Szladovits, B., Walton, R. M., Barnhart, K. F., & Blanco Chavez, J. (2012). ASVCP reference interval guidelines: determination of de novo reference intervals in veterinary species and other related topics. Veterinary Clinical Pathology, 41(4), 441–453. https://doi.org/10.1111/vcp.12006
Fujisaka, S., Watanabe, Y., & Tobe, K. (2023). The gut microbiome: A core regulator of metabolism. Journal of Endocrinology, 256(3), e220111. https://doi.org/10.1530/JOE-22-0111. EDN: https://elibrary.ru/FCNYKY
Gerritsen, J., Hornung, B., Ritari, J., Paulin, L., Rijkers, G., Schaap, P. J., De Vos, W. M., & Smidt, H. (2019). A comparative and functional genomics analysis of the genus Romboutsia provides insight into adaptation to an intestinal lifestyle. bioRxiv. https://doi.org/10.1101/845511
Hall, B., Levy, S., Dufault Thompson, K., Arp, G., Zhong, A., Ndjite, G. M., Weiss, A., Braccia, D., Jenkins, C., Grant, M. R., Abeysinghe, S., Yang, Y., Jermain, M. D., Wu, C. H., Ma, B., & Jiang, X. (2024). BilR is a gut microbial enzyme that reduces bilirubin to urobilinogen. Nature Microbiology, 9, 173–184. https://doi.org/10.1038/s41564-023-01549-x. EDN: https://elibrary.ru/UFYZMZ
Hu, W., He, Z., Du, L., Zhang, L., Li, J., Ma, Y., & Bi, S. (2023). Biomarkers of oxidative stress in broiler chickens attacked by lipopolysaccharide: A systematic review and meta analysis. Ecotoxicology and Environmental Safety, 266, 115606. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2023.115606. EDN: https://elibrary.ru/QZXKYJ
Indriani, S., Srisakultiew, N., Yuliana, N. D., Yongsawatdigul, J., Benjakul, S., & Pongsetkul, J. (2024). Metabolomic profiles and compositional differences involved in flavor characteristics of raw breast meat from slow and fast growing chickens in Thailand. Poultry Science, 103(11), 104230. https://doi.org/10.1016/j.psj.2024.104230. EDN: https://elibrary.ru/IKXEXW
Karasawa, Y. (1989). Ammonia production from uric acid, urea, and amino acids and its absorption from the ceca of the cockerel. Journal of Experimental Zoology Supplement, 75–80. https://doi.org/10.1002/jez.1402520513
Karisa, B. K., Thomson, J., Wang, Z., Li, C., Montanholi, Y. R., Miller, S. P., Moore, S. S., & Plastow, G. S. (2014). Plasma metabolites associated with residual feed intake and other productivity performance traits in beef cattle. Livestock Science, 165, 200–211. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2014.03.002
Kırbaş, A., Kaman, R., Merhan, O., Bozukluhan, K., Değirmençay, S., & Sertaç, M. (2021). Evaluation of acute phase response and oxidative damage in sheep naturally infected with Streptococcus Pluranimalium using haptoglobin, nitric oxide, and malondialdehyde levels. Fırat University Veterinary Journal of Health Sciences, 35(3), 145–150.
Krasnodebska Depta, A., & Koncicki, A. (2000). Physiological values of selected serum biochemical indices in broiler chickens. Medycyna Weterynaryjna, 56(7), 456–460.
Lee, D. J. (1977). Urease activity in the digestive tract of the chick and its role in the utilisation of urea as a source of non amino nitrogen. British Poultry Science, 18(4), 449–458. https://doi.org/10.1080/00071667708416385
Li, J., Akanno, E. C., Valente, T. S., Abo Ismail, M., Karisa, B. K., Wang, Z., & Plastow, G. S. (2020). Genomic heritability and genome wide association studies of plasma metabolites in crossbred beef cattle. Frontiers in Genetics, 11. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.538600. EDN: https://elibrary.ru/CNXOGS
Lichtenberg, S., Trifonova, O. P., Maslov, D. L., Balashova, E. E., & Lokhov, P. G. (2021). Metabolomic laboratory developed tests: current status and perspectives. Metabolites, 11(7), 423. https://doi.org/10.3390/metabo11070423. EDN: https://elibrary.ru/RETLGK
Lin, T. C., Soorneedi, A., Guan, Y., Tang, Y., Shi, E., Moore, M. D., & Liu, Z. (2023). Turicibacter fermentation enhances the inhibitory effects of Antrodia camphorata supplementation on tumorigenic serotonin and Wnt pathways and promotes ROS mediated apoptosis of Caco 2 cells. Frontiers in Pharmacology, 14, 1203087. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1203087. EDN: https://elibrary.ru/WSUGZQ
Liu, T., Ruan, S., Mo, Q., Zhao, M., Wang, J., Ye, Z., Chen, L., & Feng, F. (2023). Integrated serum metabolome and gut microbiome to decipher chicken amino acid improvements induced by medium chain monoglycerides. Metabolites, 13(2), 208. https://doi.org/10.3390/metabo13020208. EDN: https://elibrary.ru/IWIRMD
Lu, G., Li, Y., Mao, K., Zang, Y., Zhao, X., Qiu, Q., Qu, M., & Ouyang, K. (2022). Effects of rumen protected creatine pyruvate on meat quality, hepatic gluconeogenesis, and muscle energy metabolism of long distance transported beef cattle. Frontiers in Animal Science, 3, 904503. https://doi.org/10.3389/fanim.2022.904503. EDN: https://elibrary.ru/ZASGRZ
Marciano, D. P., & Snyder, M. P. (2019). Personalized metabolomics. В: D’Alessandro, A. (Ed.), High Throughput Metabolomics (Methods in Molecular Biology, Vol. 1978). Humana. https://doi.org/10.1007/978 1 4939 9236 2_27
Matthies, C., Evers, S., Ludwig, W., & Schink, B. (2000). Anaerovorax odorimutans gen. nov., sp. nov., a putrescine fermenting, strictly anaerobic bacterium. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 50, 1591–1594. https://doi.org/10.1099/00207713 50 4 1591
Miao, X., Wu, T., Pan, H., Zhang, Y., Liu, J., Fan, Y., Du, L., Gong, Y., Li, L., Huang, T., & Ning, Z. (2024). Integrative analysis of the ovarian metabolome and transcriptome of the Yaoshan chicken and its improved hybrids. Frontiers in Genetics, 15, 1416283. https://doi.org/10.3389/fgene.2024.1416283. EDN: https://elibrary.ru/DUMSNG
Nagalakshmi, D., Sastry, V. R., Katiyar, R. C., Agrawal, D. K., & Verma, S. V. (1999). Performance of broiler chicks fed on diets containing urea ammoniated neem (Azadirachta indica) kernel cake. British Poultry Science, 40(1), 77–83. https://doi.org/10.1080/00071669987863
Noecker, C., Sanchez, J., Bisanz, J. E., Escalante, V., Alexander, M., Trepka, K., Heinken, A., Liu, Y., Dodd, D., Thiele, I., DeFelice, B. C., & Turnbaugh, P. J. (2023). Systems biology elucidates the distinctive metabolic niche filled by the human gut microbe Eggerthella lenta. PLoS Biology, 21(5), e3002125. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3002125. EDN: https://elibrary.ru/AFXFVY
Qaid, M. M., Al Mufarrej, S. I., Azzam, M. M., Al Garadi, M. A., Albaadani, H. H., Alhidary, I. A., & Aljumaah, R. S. (2021). Growth performance, serum biochemical indices, duodenal histomorphology, and cecal microbiota of broiler chickens fed on diets supplemented with cinnamon bark powder at prestarter and starter phases. Animals, 11(1), 94. https://doi.org/10.3390/ani11010094. EDN: https://elibrary.ru/AZMFVB
Shajahmetova, E., Deryabin, D., & Duskaev, G. (2021). Gamma lactone and vanillic acid change the microbiome of broiler blind appendage. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 35(S1), S74. EDN: https://elibrary.ru/NMEVGQ
Tian, J., Zhu, X., Wu, H., Wang, Y., & Hu, X. (2023). Serum metabolic profile and metabolome genome wide association study in chicken. Journal of Animal Science and Biotechnology, 14(69). https://doi.org/10.1186/s40104 023 00868 7. EDN: https://elibrary.ru/RTBIPI
Vítek, L., & Tiribelli, C. (2025). Gut microbiota and bilirubin metabolism: unveiling new pathways in health and disease. Trends in Molecular Medicine. https://doi.org/10.1016/j.molmed.2024.12.007. EDN: https://elibrary.ru/BIATBM
Wu, M., Zuo, S., Maiorano, G., Kosobucki, P., & Stadnicka, K. (2022). How to employ metabolomic analysis to research on functions of prebiotics and probiotics in poultry gut health? Frontiers in Microbiology, 13, 1040434. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1040434. EDN: https://elibrary.ru/BPXNOX
Wuthier, P. R., & Stratton, P. O. (1957). The creatinine level of blood serum as an indicator of carcass composition. Journal of Animal Science, 16(4), 961–966. https://doi.org/10.2527/jas1957.164961x
Yang, S., Yang, Y., Long, X., Li, H., Zhang, F., & Wang, Z. (2023). Integrated analysis of the effects of cecal microbiota and serum metabolome on market weights of Chinese native chickens. Animals, 13(19), 3034. https://doi.org/10.3390/ani13193034. EDN: https://elibrary.ru/BPLPAE
Copyright (c) 2026 Dmitry G. Deryabin, Ludmila V. Vlasenko, Ilshat F. Karimov, Galimzhan K. Duskaev
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
