Морфофункциональные изменения системы крови и органов периферической иммунной системы у морских свинок при экспериментальном моделировании трихинеллезной инвазии и иммунной недостаточности
Аннотация
Обоснование. Морские свинки – перспективная модель для изучения инфекционных и неинфекционных заболеваний, благодаря сходству их иммунологических механизмов с человеческими. Они активно используются для моделирования экспериментальных патологий.
Цель исследования – сравнительное изучение вторичной иммунной недостаточности при инвазии Т. pseudospiralis и Т. spiralis и анализ гематологических и иммуноморфологических показателей.
Материалы и методы. Объектом исследования служили морские свинки массой 250-260 грамм. Исследование проводилось на морских свинках (Cavia porcellus), массой 250-260 г. Созданы четыре группы по пять животных: первая – перорально инвазирована 10 личинками Trichinella pseudospiralis (10 личинок/г массы тела); вторая – 10 личинками Trichinella spiralis; третья – с иммуносупрессией, вызванной дексаметазоном; четвертая – контрольная группа. После завершения экспериментального исследования, направленного на моделирование трихинеллезной инвазии у морских свинок в условиях искусственно индуцированной иммунной недостаточности, были проведены иммуноморфологические исследования, с целью детального сравнения изменений в системе крови и органах периферической иммунной системы для оценки патофизиологических механизмов, обусловленных данным патогенным воздействием. Также в рамках настоящего исследования предпринята попытка детального описания распределения личинок и иммуноморфологических показателей у морских свинок, инвазированных Trichinella pseudospiralis и Trichinella spiralis.
Результаты. Установлено, что при инвазии Trichinella pseudospiralis распределение личинок в мышечной ткани более равномерно по сравнению с трихинеллезом, вызванным Trichinella spiralis. При анализе гематологических показателей установлено значительное снижение количества эритроцитов и гемоглобина в группах инвазированных животных. Иммуноморфологические показатели, определяющие состояние лимфоидной ткани, ассоциированной с кишечником не имели значительных отличий у животных, инвазированных Т. pseudospiralis и Т. spiralis, и животных с иммунодефицитом. Несмотря на то, что при изучении распределения личинок отметили корреляцию в заселении ими отдельных групп мышц, Установлено, что данное животное является оптимальной моделью для воспроизведения и изучения иммунологических аспектов патогенеза трихинеллеза. Описаны наиболее важные гематологические и иммуноморфологические показатели у животных, инвазированных Т. pseudospiralis и Т. spiralis и установлено, что при одинаковых дозах заражения общее количество личинок Т. pseudospiralis значительно превосходило количество Т. spiralis.
Морские свинки – перспективная модель для изучения инфекционных и неинфекционных патологий, включая иммунологические аспекты трихинеллеза. Они близки к человеку по ключевым параметрам систем комплемента и гистосовместимости, а также имеют сходство во многих белках.
Скачивания
Литература
Ацапкина, А. А., Крышень, К. Л., Касторнова, А. Е., Макарова, М. Н., & Макаров, В. Г. (2014). Иммунологический статус лабораторных животных при моделировании состояний гиперчувствительности немедленного типа. Международный вестник ветеринарии, (1), 91–99.
Бландова, З. К., Душкин, В. А., Малашенко, А. М., & Шмидт, Е. Ф. (1983). Линии лабораторных животных для медико биологических исследований. Наука.
Жданова, О. Б., Андреянов, О. Н., Часовских, О. В., Успенский, А. В., & Соболева, О. А. (2024). Особенности иммунологической и постмортальной диагностики трихинеллеза свиней, вызванного T. pseudospiralis. Свиноводство, 8, 35–37. https://doi.org/10.37925/0039-713X-2024-8-35-37. EDN: https://elibrary.ru/TTRTVV
Жданова, О. Б., Часовских, О. В., & Успенский, А. В. (2024). Влияние экспериментальной инвазии Т. pseudospiralis на морфологию селезёнки куриц (Gallus domesticus). Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(3), 167–185. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-3-1155. EDN: https://elibrary.ru/IZOLXI
Жданова, О. Б., Успенский, А. В., Написанова, Л. А., Часовских, О. В., Россохин, Д. В., Андреянов, О. Н., Малышева, Н. С., & Качанова, Е. О. (2023). Влияние интенсивности инвазии на морфологические характеристики личинок Trichinella spiralis при экспериментальном заражении белых крыс и распределение их в мышцах. Российский паразитологический журнал, 1, 74–83. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2023-17-1-74-83. EDN: https://elibrary.ru/NBOGKJ
Макарова, М. Н., & Макаров, В. Г. (2024). Использование морских свинок в доклинических исследованиях. Лабораторные животные для научных исследований, 2, 4–26. https://doi.org/10.57034/2618723X-2024-02-01. EDN: https://elibrary.ru/LNPQKI
Мирошников, М. В., Султанова, К. Т., Ковалева, М. А., & Макарова, М. Н. (2022). Вариабельность биохимических показателей крови и установление референтных интервалов в доклинических исследованиях. Сообщение 7: морские свинки. Лабораторные животные для научных исследований, 3, 4–15. https://doi.org/10.57034/2618723X-2022-03-01. EDN: https://elibrary.ru/NMQMUR
Норматов, Р. А., & Марьяновская, Ю. В. (2017). Лимфоидная ткань кишечника как основа иммунной системы пищеварительного тракта. Молодой ученый, 20(154), 201–203. EDN: https://elibrary.ru/YPECXV
Раисов, Т. К., Темирбеков, Д. А., Архипов, Г. С., & Озерецковская, Н. Н. (1990). Изменения в инвазионном процессе и иммунном ответе хозяина во время лечения мебендазолом и вольтареном экспериментального трихинеллёза у морских свинок. Медицинская паразитология, 2, 31–35.
Слесаренко, Н. А., Комякова, В. А., & Степанишин, В. В. (2019). Морфофункциональная характеристика кишечника у представителей отряда грызунов. Лабораторные животные для научных исследований, 3, 1. https://doi.org/10.29296/2618723X-2019-03-01. EDN: https://elibrary.ru/PVCYTN
Трегубова, Н. В., Исмаилов, И. С., & Ткаченко, М. А. (2013). Морские свинки — биологические объекты научных исследований. Вестник АПК Ставрополья, 4(12), 211–215. EDN: https://elibrary.ru/QADRDN
Catty, D. (1969). The immunology of nematode infections. Trichinosis in guinea pigs as a model. Monogr Allergy, 5, 1–134. https://doi.org/10.1159/isbn.978-3-8055-0436-2
Card, S. E., Tompkins, S. F., & Brien, J. F. (1989). Ontogeny of the activity of alcohol dehydrogenase and aldehyde dehydrogenases in the liver and placenta of the guinea pig. Biochemical Pharmacology, 38(15), 2535–2541. https://doi.org/10.1016/0006-2952(89)90099-3
Kim, C. W. (1966). Delayed hypersensitivity to Trichinella spiralis antigens in irradiated guinea pigs. The Journal of Parasitology, 52(4), 722–726. https://doi.org/10.2307/3276440
Kallós, P., & Pagel, W. (1937). Experimentelle Untersuchungen über Asthma bronchiale. Acta Medica Scandinavica, 91, 292–305. https://doi.org/10.1111/j.0954-6820.1937.tb16045.x
Himeno, S., Takekawa, A., Toyoda, H., & Imura, N. (1993). Tissue specific expression of glutathione peroxidase gene in guinea pigs. Biochimica et Biophysica Acta, 1173(3), 283–288. https://doi.org/10.1016/0167-4781(93)90125-W
Rudneva, O. V., Napisanova, L. A., Zhdanova, O. B., & Berezhko, V. K. (2018). Evaluation of the protective activity of different immunostimulatory drugs at the experimental trichinosis on white mice. International Journal of High Dilution Research, 17(2), 17–18. EDN: https://elibrary.ru/SCXENM
References
Atsapkina, A. A., Kryshen, K. L., Kastornova, A. E., Makarova, M. N., & Makarov, V. G. (2014). Immunological status of laboratory animals in modeling immediate type hypersensitivity states. International Bulletin of Veterinary Medicine, (1), 91–99.
Blandova, Z. K., Dushkin, V. A., Malashenko, A. M., & Shmidt, E. F. (1983). Lines of laboratory animals for biomedical research. Nauka.
Zhdanova, O. B., Andreyanov, O. N., Chasovskikh, O. V., Uspensky, A. V., & Soboleva, O. A. (2024). Features of immunological and postmortem diagnosis of trichinellosis in pigs caused by T. pseudospiralis. Pig Farming, 8, 35–37. https://doi.org/10.37925/0039-713X-2024-8-35-37. EDN: https://elibrary.ru/TTRTVV
Zhdanova, O. B., Chasovskikh, O. V., & Uspensky, A. V. (2024). The effect of experimental T. pseudospiralis invasion on the spleen morphology of chickens (Gallus domesticus). Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(3), 167–185. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-3-1155. EDN: https://elibrary.ru/IZOLXI
Zhdanova, O. B., Uspensky, A. V., Napisanova, L. A., Chasovskikh, O. V., Rossokhin, D. V., Andreyanov, O. N., Malysheva, N. S., & Kachanova, E. O. (2023). The effect of infection intensity on the morphological characteristics of Trichinella spiralis larvae in experimentally infected white rats and their distribution in muscles. Russian Journal of Parasitology, 1, 74–83. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2023-17-1-74-83. EDN: https://elibrary.ru/NBOGKJ
Makarova, M. N., & Makarov, V. G. (2024). Use of guinea pigs in preclinical studies. Laboratory Animals for Scientific Research, 2, 4–26. https://doi.org/10.57034/2618723X-2024-02-01. EDN: https://elibrary.ru/LNPQKI
Miroshnikov, M. V., Sultanova, K. T., Kovaleva, M. A., & Makarova, M. N. (2022). Variability of blood biochemical parameters and establishment of reference intervals in preclinical studies. Report 7: guinea pigs. Laboratory Animals for Scientific Research, 3, 4–15. https://doi.org/10.57034/2618723X-2022-03-01. EDN: https://elibrary.ru/NMQMUR
Normatov, R. A., & Maryanovskaya, Y. V. (2017). Intestinal lymphoid tissue as the basis of the digestive tract immune system. Young Scientist, 20(154), 201–203. EDN: https://elibrary.ru/YPECXV
Raisov, T. K., Temirbekov, D. A., Arkhipov, G. S., & Ozeretskovskaya, N. N. (1990). Changes in the invasion process and host immune response during treatment with mebendazole and voltaren in experimental trichinellosis in guinea pigs. Medical Parasitology, 2, 31–35.
Slesarenko, N. A., Komyakova, V. A., & Stepanishin, V. V. (2019). Morphofunctional characteristics of the intestine in representatives of the rodent order. Laboratory Animals for Scientific Research, 3, 1. https://doi.org/10.29296/2618723X-2019-03-01. EDN: https://elibrary.ru/PVCYTN
Tregubova, N. V., Ismailov, I. S., & Tkachenko, M. A. (2013). Guinea pigs as biological objects for scientific research. Bulletin of the Agro Industrial Complex of Stavropol Territory, 4(12), 211–215. EDN: https://elibrary.ru/QADRDN
Catty, D. (1969). The immunology of nematode infections. Trichinosis in guinea pigs as a model. Monographs in Allergy, 5, 1–134. https://doi.org/10.1159/isbn.978-3-8055-0436-2
Card, S. E., Tompkins, S. F., & Brien, J. F. (1989). Ontogeny of the activity of alcohol dehydrogenase and aldehyde dehydrogenases in the liver and placenta of the guinea pig. Biochemical Pharmacology, 38(15), 2535–2541. https://doi.org/10.1016/0006-2952(89)90099-3
Kim, C. W. (1966). Delayed hypersensitivity to Trichinella spiralis antigens in irradiated guinea pigs. The Journal of Parasitology, 52(4), 722–726. https://doi.org/10.2307/3276440
Kallós, P., & Pagel, W. (1937). Experimentelle Untersuchungen über Asthma bronchiale. Acta Medica Scandinavica, 91, 292–305. https://doi.org/10.1111/j.0954-6820.1937.tb16045.x
Himeno, S., Takekawa, A., Toyoda, H., & Imura, N. (1993). Tissue specific expression of glutathione peroxidase gene in guinea pigs. Biochimica et Biophysica Acta, 1173(3), 283–288. https://doi.org/10.1016/0167-4781(93)90125-W
Rudneva, O. V., Napisanova, L. A., Zhdanova, O. B., & Berezhko, V. K. (2018). Evaluation of the protective activity of different immunostimulatory drugs at the experimental trichinosis on white mice. International Journal of High Dilution Research, 17(2), 17–18. EDN: https://elibrary.ru/SCXENM
Copyright (c) 2026 Olga B. Zhdanova, Olga V. Chasovskikh

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.





















































