МИКОПЛАЗМЕННАЯ КОНТАМИНАЦИЯ СПЕРМЫ БЫКОВ, ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ДЛЯ ИСКУССТВЕННОГО ОСЕМЕНЕНИЯ
Аннотация
Технологии искусственного осеменения крупного рогатого скота активно применяются в животноводческих хозяйствах России, при этом контроль качества спермопродукции не предполагает тестирование спермы быков на наличие микроорганизмов рода Mycoplasma. Активное применение молекулярно-генетических методов позволяет проводить быстрое выявление и видовую идентификацию патогенных микоплазм, однако не говорит о жизнеспособности выявленного патогена. Целью работы являлось изучение микоплазменной контаминации спермопродукции, представленной на рынке Российской Федерации и определение соответствия результатов метода ПЦР и традиционно применяемого микробиологического метода. В работе приведены результаты первого для России исследования встречаемости и жизнеспособности патогенных видов Mycoplasma bovis, M. bovigenitalium, M. californicum и Ureaplasma diversum в спермопродукции. Исследовано 447 образцов криоконсервированной спермы быков-производителей различных пород из отечественных племенных центров и племенных хозяйств США, Великобритании, Нидерландов, поставляющих данную продукцию на рынок Российской Федерации. Проведенный анализ показал высокую частоту встречаемости в сперме быков ДНК микроорганизмов рода Mycoplasma (до 70, 9%), M. bovigenitalium была наиболее часто выявляемым видом микоплазм из тестируемых. Показаны случаи идентификации сразу нескольких видов микоплазм в одном образце – в 58,8% исследованных образцов спермопродукции из отечественных хозяйств и в 15% образцов спермы из зарубежных племенных центров. Жизнеспособность микоплазм, положительных по данным ПЦР-анализа, при тестировании 65 образцов, продемонстрирована микробиологическим методом для 94% образцов. Соответствие результатов микробиологического и молекулярно-генетического обнаружения микоплазм и уреаплазм составило 88,3%. Полученные результаты свидетельствует о распространенности микоплазм в спермопродукции и необходимости совершенствования системы контроля племенного материала с целью предупреждения распространения микоплазменных инфекций КРС при использовании технологий искусственного осеменения.
Скачивания
Литература
References
Kozlova A.D., Gorbacheva N.S., Khayerova R.F., Krasnikova M.S., Lazareva Ye.A., Yatsentyuk S.P. Differentsiatsiya Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma californicum i vyyavleniye Ureaplasma diversum metodom PTSR v real’nom vremeni [Differentiation of Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma californicum and identification of Ureaplasma diversum by real-time PCR]. Sel’skokhozyaystvennaya Biologiya [Agricultural Biology], 2019, vol. 54, no. 2, pp. 378-385. http://dx.doi.org/10.15389/agrobiology.2019.2.378rus
Krasikov A.P., Rudakov N.V. Mikoplazmozy Cheloveka i Zhivotnykh i Ikh Epidemiologicheskoye i Epizootologicheskoye Znacheniye [Mycoplasmosis of Humans and Animals and Their Epidemiological and Epizootic Significance]. Omsk: Omsk scientific bulletin, 2016, 608 p.
Orlova S. T., Sidorchuk A. A., Grebennikova T.V. Optimizatsiya metodov vzyatiya prob i kul’tivirovaniya mikoplazm so slizistykh obolochek respiratornogo trakta i kon”yunktivy sobak i koshek [Optimization of methods for sampling and cultivation of mycoplasmas from the mucous membranes of the respiratory tract and conjunctiva of dogs and cats]. Veterinariya, Zootekhniya i Biotekhnologiya [Animal Science and Biotechnology], 2018, vol. 2, no. 12, pp. 6-15.
Alkhussen M.A., Nesterov A.A., Kirpichenko V.V., Yatsentyuk S.P., Sprygin A.V., B’yadovskaya O.P., Kononov A.V. Rasprostraneniye mikoplazmozov krupnogo rogatogo skota na zhivotnovodcheskikh fermakh v Rossiyskoy Federatsii v period s 2015 po 2018 god [Bovine mycoplasmosis occurrence on livestock farms in the Russian Federation for 2015–2018]. Veterinariya Segodnya [Veterinary Science Today], 2020, no. 2, pp. 102-108. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-102-108
Bashiruddin J.B. Frey J., Heldtander M., Königsson K-E., Hotzel H., Diller R., Santis P., Botelh A., Aylin R.D., Nicholas R.A.J., Thiaucourt F., Sachs K. Evaluation of PCR systems for the identification and differentiation of Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma bovis: A collaborative trial. The Veterinary Journal, 2005, vol. 169, no. 2, pp. 268-275. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2004.01.018
Bokma J., Van Driessche L., Deprez P., Haesebrouck F., Vahl M., Weesendorp E., Deurenberg R.H., Pardon B., Boyen F. Rapid identification of Mycoplasma bovis strains from bovine bronchoalveolar lavage fluid with matrix-assisted laser desorption ionization–time of flight mass spectrometry after enrichment procedure. Journal of Clinical Microbiology, 2020, vol. 58, no. 6, pp. 4-20. https://doi.org/10.1128/JCM.00004-20
Boonyayatra S., Fox L.K., Besser T.E., Sawant A., Gay J.M., Raviv Z. PCR assay and PCR-restriction fragment length polymorphism combination identifying the 3 primary Mycoplasma species causing mastitis. Journal of Dairy Science, 2012, vol. 95, no. 1, pp. 196-205. https://doi.org/10.3168/jds.2011-4531
Clothier K.A., Jordan D.M., Thompson C.J., Kinyon J.M., Frana T.S., Strait E. L. Mycoplasma bovis real-time polymerase chain reaction assay validation and diagnostic performance. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2010, vol. 22, no. 6, pp. 956-960. http://dx.doi.org/10.1177/104063871002200618
Eaglesome M.D., Garcia M.M. Disease risks to animal health from artificial insemination with bovine semen. Revue Scientifique et Technique, 1997, no. 16, pp. 215-225. https://doi.org/10.20506/rst.16.1.1017
Haapala V., Pohjanvirta T., Vähänikkilä N., Halkilahti J., Simonen H., Pelkonen S., Soveri T., Simojoki H., Autio T. Semen as a source of Mycoplasma bovis mastitis in dairy herds. Veterinary Microbiology, 2018, no. 216, pp. 60-66. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.02.005
Marques, L.M., Buzinhani, M., Neto, R.L, Oliveira, R.C., Yamaguti, M., Guimarães, A.M., Timenetsky, J. Detection of Ureaplasma diversum in bovine semen straws for artificial insemination. Veterinary Record, 2009, no. 165, pp. 572-573. http://dx.doi.org/10.1136/vr.165.19.572
Morton, J.M., Bosward, K.L., Sheehy, P.A., Parker, A.M., House, J.K. Isolation of Mycoplasma spp. and serological responses in bulls prior to and following their introduction into Mycoplasma bovis-infected dairy herds. Journal of Dairy Science, 2018, no. 101, pp. 7412-7424. http://dx.doi.org/10.3168/jds.2018-14457
Ogata M. Recovery and identification of canine and feline mycoplasmas. Methods in Mycoplasmology. Volume II: Diagnostic Mycoplasmology [In Tully J.G., Razin S. eds.]. New York: Academic Press, 1983, pp. 105-113.
Parker, A.M., House, J.K., Hazelton, M.S., Bosward, K.L., Sheehy, P.A. Comparison of culture and a multiplex probe PCR for identifying Mycoplasma species in bovine milk, semen and swab samples. PLoS One, 2017, vol. 12, no. 3. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0173422
Rossetti B.C., Frey J., Pilo P. Direct detection of Mycoplasma bovis in milk and tissue samples by real-time PCR. Molecular and Cellular Probes, 2010, no. 24, pp. 321-323. http://dx.doi.org/10.1016/j.mcp.2010.05.001
Sachse, K., Salam, H.S.H., Diller, R., Schubert, E., Hoffmann, B., Hotzel, H. Use of a novel real-time PCR technique to monitor and quantitate Mycoplasma bovis infection in cattle herds with mastitis and respiratory disease. The Veterinary Journal, 2010, vol. 186, pp. 299-303. http://dx.doi.org/10.1016/j.tvjl.2009.10.008
Список литературы
Дифференциация Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma californicum и выявление Ureaplasma diversum методом ПЦР в реальном времени / Козлова А.Д., Горбачева Н.С., Хаерова Р.Ф., Красникова М.С., Лазарева Е.А., Яцентюк С.П. // Сельскохозяйственная биология, 2019, Т. 54, № 2, С. 378-385. http://dx.doi.org/10.15389/agrobiology.2019.2.378rus
Красиков А.П., Рудаков Н.В. Микоплазмозы человека и животных и их эпидемиологическое и эпизоотологическое значение. О.: «Издательский центр «Омский научный вестник,» 2016. 608 с.
Орлова С. Т., Сидорчук А. А., Гребенникова Т.В. Оптимизация методов взятия проб и культивирования микоплазм со слизистых оболочек респираторного тракта и конъюнктивы собак и кошек // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2018. Т 2. №12. С. 6-15.
Распространение микоплазмозов крупного рогатого скота на животноводческих фермах в Российской Федерации в период с 2015 по 2018 год / Алхуссен М.А., Нестеров А.А., Кирпиченко В.В., Яцентюк С.П., Спрыгин А.В., Бьядовская О.П., Кононов А.В. // Ветеринария сегодня. 2020. №2. С. 102-108. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-102-108
Bashiruddin J.B. Frey J., Heldtander M., Königsson K-E., Hotzel H., Diller R., Santis P., Botelh A., Aylin R.D., Nicholas R.A.J., Thiaucourt F., Sachs K. Evaluation of PCR systems for the identification and differentiation of Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma bovis: A collaborative trial // The veterinary journal, 2005, vol. 169, no. 2, pp. 268-275. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2004.01.018
Bokma J., Van Driessche L., Deprez P., Haesebrouck F., Vahl M., Weesendorp E., Deurenberg R.H., Pardon B., Boyen F. Rapid identification of Mycoplasma bovis strains from bovine bronchoalveolar lavage fluid with matrix-assisted laser desorption ionization–time of flight mass spectrometry after enrichment procedure // Journal of clinical microbiology, 2020, vol. 58, no. 6, pp. 4-20. https://doi.org/10.1128/JCM.00004-20
Boonyayatra S., Fox L.K., Besser T.E., Sawant A., Gay J.M., Raviv Z. PCR assay and PCR-restriction fragment length polymorphism combination identifying the 3 primary Mycoplasma species causing mastitis // Journal of dairy science, 2012, vol. 95, no. 1, pp. 196-205. https://doi.org/10.3168/jds.2011-4531
Clothier K.A., Jordan D.M., Thompson C.J., Kinyon J.M., Frana T.S., Strait E. L. Mycoplasma bovis real-time polymerase chain reaction assay validation and diagnostic performance // Journal of veterinary diagnostic investigation, 2010, vol. 22, no. 6, pp. 956-960. http://dx.doi.org/10.1177/104063871002200618
Eaglesome M.D., Garcia M.M. Disease risks to animal health from artificial insemination with bovine semen // Revue scientifique et technique, 1997, no. 16, pp. 215-225. https://doi.org/10.20506/rst.16.1.1017
Haapala V., Pohjanvirta T., Vähänikkilä N., Halkilahti J., Simonen H., Pelkonen S., Soveri T., Simojoki H., Autio T. Semen as a source of Mycoplasma bovis mastitis in dairy herds // Veterinary microbiology, 2018, no. 216, pp. 60-66. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.02.005
Marques, L.M., Buzinhani, M., Neto, R.L, Oliveira, R.C., Yamaguti, M., Guimarães, A.M., Timenetsky, J. Detection of Ureaplasma diversum in bovine semen straws for artificial insemination // Veterinary record, 2009, no. 165, pp. 572-573. http://dx.doi.org/10.1136/vr.165.19.572
Morton, J.M., Bosward, K.L., Sheehy, P.A., Parker, A.M., House, J.K. Isolation of Mycoplasma spp. and serological responses in bulls prior to and following their introduction into Mycoplasma bovis-infected dairy herds // Journal of dairy science, 2018, no. 101, pp. 7412-7424. http://dx.doi.org/10.3168/jds.2018-14457
Ogata M. Recovery and identification of canine and feline mycoplasmas // Methods in Mycoplasmology. Volume II: Diagnostic Mycoplasmology / eds. Tully J.G., Razin S. New York: Academic Press, 1983, pp. 105-113.
Parker, A.M., House, J.K., Hazelton, M.S., Bosward, K.L., Sheehy, P.A. Comparison of culture and a multiplex probe PCR for identifying Mycoplasma species in bovine milk, semen and swab samples // PLoS one, 2017, vol. 12, no. 3. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0173422
Rossetti B.C., Frey J., Pilo P. Direct detection of Mycoplasma bovis in milk and tissue samples by real-time PCR // Molecular and cellular probes, 2010, no. 24, pp. 321-323. http://dx.doi.org/10.1016/j.mcp.2010.05.001
Sachse, K., Salam, H.S.H., Diller, R., Schubert, E., Hoffmann, B., Hotzel, H. Use of a novel real-time PCR technique to monitor and quantitate Mycoplasma bovis infection in cattle herds with mastitis and respiratory disease // The veterinary journal, 2010, vol. 186, pp. 299-303. http://dx.doi.org/10.1016/j.tvjl.2009.10.008
Просмотров аннотации: 485 Загрузок PDF: 165
Copyright (c) 2023 Svetlana P. Yatsentyuk
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
