ВЛИЯНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО СТРЕССА НА НЕСПЕЦИФИЧЕСКУЮ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ ОРГАНИЗМА КОРОВ
Аннотация
Обоснование. Интенсификация животноводства ведет к нарушению адаптивных возможностей организма, снижению продуктивности и естественной резистентности животных. Изучение неспецифических факторов защиты организма коров позволит разработать способы повышения иммунного статуса и в качестве дополнительной информации полученные результаты могут быть использованы в селекционной работе для подбора высокорезистентных родительских пар.
Цель. Изучение клеточного и гуморального звена неспецифической резистентности при развитии стресс-реакции у крупного рогатого скота после действия технологического стресса на организм коров.
Материалы и методы. Работа проведена на 20 клинически здоровых высокопродуктивных коровах чёрно-пёстрой породы. Стрессором для коров являлась перегруппировка, смена обслуживающего персонала, проведение ветеринарно-санитарных манипуляций. Исследовали общее количество лейкоцитов, лейкограмму, бактерицидную и лизоцимную активность сыворотки крови коров стандартными клинико-лабораторными методами и морфологию лейкоцитов на сканирующем электронном микроскопе до и через 3, 14, 30 суток после технологического стресса.
Результаты. На 3-14 сутки после стресса выявлены лейкоцитоз, нейтрофилез, моноцитоз и лимфопения относительно исходного уровня. При использовании высокоразрешающей микроскопии с использованием сканирующего электронного микроскопа обнаружено появление НЕТозов в крови коров после технологического стресса. Установлено снижение бактерицидной активности сыворотки на 3 сутки после стресса с последующим ее увеличением, напротив, увеличение лизоцимной на 3 сутки сопровождалось последующим ее снижением к 30 суткам после технологического стресса относительно исходного уровня.
Заключение. Полученные данные свидетельствуют о том, что защитные силы организма являются динамичным физиологическим показателем, который необходимо учитывать в качестве общей устойчивости организма крупного рогатого скота к стрессорам для предотвращения срыва адаптационных возможностей организма.
Скачивания
Литература
Список литературы
Гаврилова Г.А., Бахметьева С.В. Неспецифическая резистентность коров, инфицированных ВЛКРС и больных лейкозом // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2005, №1 (155). С. 118-121.
Гаркави Л.Х., Квакина Е.Б., Кузьменко Т.С., Шихлярова А.И. Антистрессорные реакции и активационная терапия. Реакция активации как путь к здоровью через процессы самооргазации. – Екатеринбург: РИА «Филантроп», 2002. Т.1. 196 с.
Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на показатели красной крови интактного и альтерированного организма /
Дерюгина А.В., Иващенко М.Н., Игнатьев П.С., Самоделкин А.Г., Корягин А.С., Таламанова М.Н., Скворцова Г.А., Сидей К.Р., Белов А.А. // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2018. №3. С. 14-20. https://doi.org/10.26155/vet.zoo.bio.201904011
Диагностические возможности электрофоретической подвижности эритроцитов и клеток буккального эпителия при стрессе /
Дерюгина А.В., Иващенко М.Н., Игнатьев П.С., Самоделкин А.Г., Золотова М.В., Шабалин М.А., Грачева Е.А.
// Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2019. Т. 63. №1. С. 106-111. https://doi.org/10.25557/0031-2991.2019.01.106-111
Карамаева А.С. Связь показателей молочной продуктивности и естественной резистентности организма животных // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2015. № 1. С. 87–91.
Коровин А. В. Влияние сезона года на естественную резистентность коров молочных пород // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2013. № 1. С. 99–102.
Методические рекомендации по оценке и коррекции неспецифической резистентности животных рассмотрены, одобрены и рекомендованы к изданию секцией «Патология, фармакология и терапия» отделения ветеринарной медицины РАСХН (протокол № 2 от 8 июня 2005 г.), Воронеж. – 2005. – С. 18-31.
Прошина О.В., Лоскутов Н.А. Воспроизводство стада: потерянная страница // Животноводство России. 2011. № 9. С. 40-41.
Шкуратова И. А. Эколого-биологические особенности крупного рогатого скота в условиях техногенеза // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2015. № 2. С. 366–369.
D’Cruz A.A., Speir M., Bliss-Moreau M., Dietrich S., Wang S., Chen A.A., Gavillet M., Al-Obeidi A., Lawlor K.E., Vince J.E., Kelliher M.A., Hakem R., Pasparakis M., Williams D.A., Ericsson M., Croker B.A. The pseudokinase MLKL activates PAD4-dependent NET formation in necroptotic neutrophils // Science signaling, 2018, vol. 11, no. 546, p. eaao1716. https://doi.org/10.1126/scisignal.aao1716
Deryugina A. V., Ivashchenko M. N., Ignatiev P. S., Lodyanoy М. S., Samodelkin A. G. Alterations in the Phase Portrait and Electrophoretic Mobility of Erythrocytes in Various Diseases // Modern Technologies in Medicine, 2019, vol. 11, no. 2, pp. 63-67. https://doi.org/10.17691/stm2019.11.2.09
Desai J., Kumar S.V., Mulay S.R., Konrad L., Romoli S., Schauer C., Herrmann M., Bilyy R.O., Müller S., Popper B., Nakazawa D., Weidenbusch M., Thomasova D., Krautwald S., Linkermann A., Anders H. PMA and crystal-induced neutrophil extracellular trap formation involves RIPK1-RIPK3-MLKL signaling // European Journal of Immunology, 2016, vol. 46, no.1, pp. 223-229. https://doi.org/10.1002/eji.201545605
Duff G.C.; Galyean M.L. Board-invited review: Recent advances in management of highly stressed, newly received feedlot cattle // Journal of Animal Science, 2007, vol. 85, no. 3, pp. 823–840. https://doi.org/10.2527/jas.2006-501
Mormede P., Andanson S., Auperin B., Beerda B., Guemene D., Malmkvist J., Manteca X., Manteuffel G., Prunet P., Reenen C.G., Richard S., Veissier I Exploration of the hypothalamic–pituitary–adrenal function as a tool to evaluate animal welfare // Physiology & Behavior, 2007, vol. 92, pp. 317-339. https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2006.12.003
Moschonas I.C., Tselepis, A.D. The pathway of neutrophil extracellular traps towards atherosclerosis and thrombosis // Atherosclerosis, 2019, vol. 288, pp. 9-16. https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2019.06.919
Rostagno M.H. Can stress in farm animals increase food safety risk? // Foodborne pathogens & disease, 2009, vol. 6, no. 7, pp. 767-776. https://doi.org/10.1089/fpd.2009.0315
Sordillo L.M., Raphael W. Significance of metabolic stress, lipid mobilization, and inflammation on transition cow disorders // Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2013, vol. 29, no 2, pp. 267–278. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2013.03.002
Twaddell S.H., Baines K.J., Grainge C., Gibson P.G. The emerging role of neutrophil extracellular traps in respiratory disease // Chest 2019, vol. 156, no. 4, pp. 774-782. https://doi.org/10.1016/j.chest.2019.06.012
Yipp B.G., Petri B., Salina D., Jenne C.N., Scott B.N., Zbytnuik L.D., Pittman K., Asaduzzaman M., Wu, K., Meijndert H.C., Malawista S.E., de Boisfleury Chevance A., Zhang K., Conly J., Kubes P. Infection-induced NETosis is a dynamic process involving neutrophil multitasking in vivo // Nature medicine 2012, vol. 18, pp. 1386–1393. https://doi.org/10.1038/nm.2847
Yousefi S., Simon D., Stojkov D., Karsonova A., Karaulov A., Simon H.U. In vivo evidence for extracellular DNA trap formation // Cell death & disease, 2020, vol. 11 no. 300, pp. 1-15. https://doi.org/10.1038/s41419-020-2497-x
References
Gavrilova G.A., Bakhmet'eva S.V. Nespetsificheskaya rezistentnost' korov, infitsirovannykh VLKRS i bol'nykh leykozom [Nonspecific resistance of cows infected with VLCMS and leukemia patients]. Sibirskiy vestnik sel'skokhozyaystvennoy nauki [Siberian Bulletin of Agricultural Science], 2005, no. 1 (155). pp. 118-121.
Garkavi L.Kh., Kvakina E.B., Kuz'menko T.S., Shikhlyarova A.I. Antistressornye reaktsii i aktivatsionnaya terapiya. Reaktsiya aktivatsii kak put' k zdorov'yu cherez protsessy samoorgazatsii [Antistressor reactions and activation therapy. Activation reaction as a pathway to health through self-organization processes]. Yekaterinburg, RIA "Philanthropist", 2002, vol. 1, 196 p.
Deryugina A.V., Ivashchenko M.N., Ignat'ev P.S., Samodelkin A.G., Koryagin A.S., Talamanova M.N., Skvortsova G.A., Sidey K.R., Belov A.A. Deystvie nizkointensivnogo lazernogo izlucheniya na pokazateli krasnoy krovi intaktnogo i al'terirovannogo organizma [The effect of low-intensity laser radiation on the parameters of red blood of an intact and altered organism]. Veterinary, zootechnics and biotechnology, 2018, no. 3, pp. 14-20. https://doi.org/10.26155/vet.zoo.bio.201904011
Deryugina A.V., Ivashchenko M.N., Ignat'ev P.S., Samodelkin A.G., Zolotova M.V., Shabalin M.A., Gracheva E.A. Diagnosticheskie vozmozhnosti elektroforeticheskoy podvizhnosti eritrotsitov i kletok bukkal'nogo epiteliya pri stresse [Diagnostic possibilities of electrophoretic mobility of erythrocytes and buccal epithelial cells under stress]. Pathological physiology and experimental therapy, 2019, vol. 63, no. 1, pp. 106-111. https://doi.org/10.25557/0031-2991.2019.01.106-111
Karamaeva A. S. Svyaz' pokazateley molochnoy produktivnosti i estestvennoy rezistentnosti organizma zhivotnykh [Relationship between indicators of milk productivity and natural resistance of the animal organism]. Izvestiya Samarskoy gosudarstvennoy sel'skokhozyaystvennoy akademii, 2015, no. 1, pp. 87–91.
Korovin A.V. Vliyanie sezona goda na estestvennuyu rezistentnost' korov molochnykh porod [Influence of the season of the year on the natural resistance of dairy cows]. Izvestiya Orenburgskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta, 2013, no. 1, pp. 99–102.
Metodicheskie rekomendatsii po otsenke i korrektsii nespetsificheskoy rezistentnosti zhivotnykh rassmotreny, odobreny i rekomendovany k izdaniyu sektsiey «Patologiya, farmakologiya i terapiya» otdeleniya veterinarnoy meditsiny RASKhN (protokol № 2 ot 8 iyunya 2005 g.) [Guidelines for the assessment and correction of nonspecific resistance of animals are reviewed, approved and recommended for publication by the section "Pathology, pharmacology and therapy" of the Department of Veterinary Medicine of the Russian Academy of Agricultural Sciences (protocol No. 2 dated June 8, 2005)], Voronezh, 2005, pp. 18-31.
Proshina O.V., Loskutov N.A. Vosproizvodstvo stada: poteryannaya stranitsa [Herd Reproduction: The Lost Page]. Zhivotnovodstvo Rossii, 2011, no. 9, p. 40-41.
Shkuratova I. A. Ekologo-biologicheskie osobennosti krupnogo rogatogo skota v usloviyakh tekhnogeneza [Ecological and biological features of cattle in the conditions of technogenesis]. Voprosy normativno-pravovogo regulirovaniya v veterinarii [Issues of regulatory and legal regulation in veterinary medicine], 2015, no. 2, pp. 366–369.
D’Cruz A.A., Speir M., Bliss-Moreau M., Dietrich S., Wang S., Chen A.A., Gavillet M., Al-Obeidi A., Lawlor K.E., Vince J.E., Kelliher M.A., Hakem R., Pasparakis M., Williams D.A., Ericsson M., Croker B.A. The pseudokinase MLKL activates PAD4-dependent NET formation in necroptotic neutrophils. Science signaling, 2018, vol. 11, no. 546, p. eaao1716. https://doi.org/10.1126/scisignal.aao1716
Deryugina A.V., Ivashchenko M.N., Ignatiev P.S., Lodyanoy М.S., Samodelkin A.G. Alterations in the Phase Portrait and Electrophoretic Mobility of Erythrocytes in Various Diseases. Modern Technologies in Medicine, 2019, vol. 11, no. 2, pp. 63-67. https://doi.org/10.17691/stm2019.11.2.09
Desai J., Kumar S.V., Mulay S.R., Konrad L., Romoli S., Schauer C., Herrmann M., Bilyy R.O., Müller S., Popper B., Nakazawa D., Weidenbusch M., Thomasova D., Krautwald S., Linkermann A., Anders H. PMA and crystal-induced neutrophil extracellular trap formation involves RIPK1-RIPK3-MLKL signaling. European Journal of Immunology, 2016, vol. 46, no.1, pp. 223-229. https://doi.org/10.1002/eji.201545605
Duff G.C., Galyean M.L. Board-invited review: Recent advances in management of highly stressed, newly received feedlot cattle. Journal of Animal Science, 2007, vol. 85, no.3, pp. 823–840. https://doi.org/10.2527/jas.2006-501
Mormede P., Andanson S., Auperin B., Beerda B., Guemene D., Malmkvist J., Manteca X., Manteuffel G., Prunet P., Reenen C.G., Richard S., Veissier I. Exploration of the hypothalamic–pituitary–adrenal function as a tool to evaluate animal welfare. Physiology & Behavior, 2007, vol. 92, pp. 317-339. https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2006.12.003
Moschonas I.C., Tselepis, A.D. The pathway of neutrophil extracellular traps towards atherosclerosis and thrombosis. Atherosclerosis, 2019, vol. 288, pp. 9-16. https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2019.06.919
Rostagno M.H. Can stress in farm animals increase food safety risk? Foodborne pathogens & disease, 2009, vol. 6, no.7, pp. 767-776. https://doi.org/10.1089/fpd.2009.0315
Sordillo L.M., Raphael W. Significance of metabolic stress, lipid mobilization, and inflammation on transition cow disorders. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2013, vol. 29, no 2, pp. 267–278. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2013.03.002
Twaddell S.H., Baines K. J., Grainge C., Gibson P.G. The emerging role of neutrophil extracellular traps in respiratory disease. Chest, 2019, vol. 156, no. 4, pp. 774-782. https://doi.org/10.1016/j.chest.2019.06.012
Yipp B.G., Petri B., Salina D., Jenne C.N., Scott B.N., Zbytnuik L.D., Pittman K., Asaduzzaman M., Wu, K., Meijndert H. C., Malawista S. E., de Boisfleury Chevance A., Zhang K., Conly J., Kubes P. Infection-induced NETosis is a dynamic process involving neutrophil multitasking in vivo. Nature medicine, 2012, vol. 18, pp. 1386–1393. https://doi.org/10.1038/nm.2847
Yousefi S., Simon D., Stojkov D., Karsonova A., Karaulov A., Simon H.U. In vivo evidence for extracellular DNA trap formation. Cell death & disease, 2020 vol. 11 no. 300, pp. 1-15. https://doi.org/10.1038/s41419-020-2497-x
Просмотров аннотации: 309 Загрузок PDF: 272
Copyright (c) 2023 Anna V. Deryugina, Marina N. Ivashchenko, Vladislav B. Metelin, Roman S. Kovylin, Pavel S. Ignatiev
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
