Дубильные веществ конденсированного типа (проантоцианидины) в животноводстве: противопаразитарная активность (обзор литературы)
Аннотация
Обоснование. Паразитарные болезни сельскохозяйственных животных широко распространены и являются одной из причин колоссального экономического ущерба, вследствие негативного влияния на рост и развитие животных, и связанного с этим снижения продуктивности. Для сокращения потерь и качества животноводческой продукции, сохранения здоровья животных необходимо проведение терапии и профилактики гельминтозов с применением высокоэффективных и безопасных антигельминтиков. Снижение эффективности, имеющихся в арсенале лекарственных препаратов, вследствие формирования устойчивости к ним гельминтов, а также в силу их токсичности, определяет необходимость поиска альтернативных источников биологически активных соединений с антигельминтными свойствами.
Цель. Обзор и анализ отечественных и зарубежных научных публикаций, посвященных исследованиям по использованию в животноводстве в качестве антигельминтных средств растений, содержащих проантоцианидины (ПАЦ).
Материалы и методы. В основу работы положен анализ оригинальных статей и литературных обзоров, поиск которых осуществлялся в отечественных и зарубежных электронных базах данных научных публикаций PubMed, eLibrary, Scopus, Embase, Medline, GoogleScholar. Глубина поиска охватывает период 2000 – 2025 гг., доля литературных источников за 5 последних лет составляет 37 %, за 10 – 70 %. В исследовании были использованы методы структурного и системного анализов.
Результаты. Проантоцианидины широко изучается в целях их применения в качестве кормовых добавок в составе растительного сырья, экстрактов из него, и выделенных индивидуальных веществ при выращивании крупного и мелкого рогатого скота, в свиноводстве и птицеводстве. Результаты экспериментов in vitro, in situ и in vivo раскрывают вопросы корреляции концентрации проантоцианидинов и степени проявления противоглистного эффекта, а также формирования показателей продуктивности животных; действие химических препаратов аналогичного фармакологического действия на фоне совместного применения с проантоцианидинами, фазы развития растения, характеризующиеся наибольшим накоплением проантоцианидинов. Изучается действие проантоцианидинов на различных стадиях жизненного цикла паразитов: вылупления яиц, стадии линьки, взрослые особи. Показано, что основным местом антигельминтного эффекта проантоцианидинов является кутикула, связывание происходит с поверхностными белками кишечной мембраны, что приводит к нарушению процесса линьки и потере подвижности, а также секреции ферментов. Рассматриваются вопросы синергизма и антагонизма проантоцианидинов с другими группами биологически активных веществ растений и синтетических препаратов антигельминтного действия, а также грибов-нематодофагов.
Заключение. В рамках настоящей работы проанализировано около двухсот научных публикаций отечественных и зарубежных авторов, показывающих что на современном этапе развития животноводства исследования по изучению использования растительных источников дубильных веществ конденсированного типа как противопаразитарных средств, занимают важное место в аспекте улучшения состояния здоровья животных, а, следовательно, и питательной ценности продукции животноводства. В качестве перспективы подчеркивается расширения экспериментов in vivo. Однако следует отметить, что в отечественной ветеринарии уделяется недостаточно внимания поиску и изучению растительных источников богатых проантоцианидинами с целью дегельминтизации сельскохозяйственных животных.
Скачивания
Литература
Пименов, И. А., Варламова, А. И., Афанасьев, А. Д., & Одоевская, И. М. (2024). Анализ наличия резистентности у паразитических нематод Haemonchus contortus к антигельминтным препаратам бензимидазольного ряда методом гнездовой изотермической амплификации (ПЦР). Российский паразитологический журнал, 18(2), 170–178. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2024-18-2-170-178. EDN: https://elibrary.ru/XOQIXI
Архипов, И. А. (2009). Антигельминтики: фармакология и применение. Типография Россельхозакадемии. ISBN: 978-5-85941-305-8. EDN: https://elibrary.ru/QLTSHX
Демкина, О. В. (2025). Эффективность комбинированной терапии фенбендазолом и Bacillus amyloliquefaciens при лечении стронгилятозов лошадей. Российский паразитологический журнал, 19(1), 108–117. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2025-19-1-108-117. EDN: https://elibrary.ru/VLXZMY
Жданова, О. Б., Часовских, О. В., & Успенский, А. В. (2024). Влияние экспериментальной инвазии T. pseudospiralis на морфологию селезёнки куриц (Gallus domesticus). Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(3), 167–185. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-3-1155. EDN: https://elibrary.ru/IZOLXI
Жученко, Н. С. (2025). Наиболее эффективные методы оценки устойчивости возбудителей паразитарных заболеваний мелких жвачных животных к антигельминтным препаратам. Ветеринарный врач, (1), 109–118. https://doi.org/10.33632/1998-698X_2025_1_109. EDN: https://elibrary.ru/JOELVG
Фролова, А. С., Милентьева, А. С., Федорова, А. М., Асякина, Л. К., & Просеков, А. Ю. (2024). Оценка безопасности ряда растительных метаболитов — перспективных геропротекторов в исследовании in vivo. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(3), 64–91. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-3-1146. EDN: https://elibrary.ru/AATNBO
Панова, О. А., Архипов, И. А., Баранова, М. В., & Хрусталев, А. В. (2022). Проблема антигельминтной резистентности в коневодстве. Российский паразитологический журнал, 16(2), 230–242. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-2-230-242. EDN: https://elibrary.ru/RWWNAG
Коколова, М. Л., Гаврильева, Л. Ю., Прибылых, Е. И., & Попова, Н. В. (2024). Профилактика и лечение паразитарных болезней лошадей табунного содержания в начале холодного периода в Якутии. Ветеринария и кормление, (2), 35–39. https://doi.org/10.30917/attvk-1814-9588-2024-2-8. EDN: https://elibrary.ru/NNOJJG
Радионов, А. В., & Архипов, И. А. (2010). Распространение нематодозов крупного рогатого скота при разной технологии содержания в России. Российский паразитологический журнал, (4), 54–58. EDN: https://elibrary.ru/NEETIV
Сафиуллин, Р. Т., & Хромов, К. А. (2009). Ущерб от смешанной инвазии коров и молодняка крупного рогатого скота, вызванный фасциолами и стронгилятами пищеварительного тракта. Российский паразитологический журнал, (2), 81–85. EDN: https://elibrary.ru/KVTEAZ
Athanasiadou, S., Kyriazakis, I., Jackson, F., & Coop, R. L. (2001). Direct anthelmintic effects of condensed tannins towards different gastrointestinal nematodes of sheep: in vitro and in vivo studies. Veterinary Parasitology, 99(3), 205–219. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(01)00467-8. EDN: https://elibrary.ru/AQZYYF
Athanasiadou, S., Kyriazakis, I., Jackson, F., & Coop, R. L. (2000). Effects of long-term feeding of condensed tannins to sheep infected with Trichostrongylus colubriformis. International Journal of Parasitology, 30(9), 1025–1033. https://doi.org/10.1016/s0020-7519(00)00083-7
Baltrušis, A., Claude, L., Halvarsson, P., Mikko, S., & Höglund, J. (2021). Using droplet digital PCR for the detection of hco-acr-8b levamisole resistance marker in H. contortus. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 15, 168–176. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2021.03.002. EDN: https://elibrary.ru/IGZDBX
Milentyeva, I. S., Fedorova, A. M., Larichev, T. A., & Altshuler, O. G. (2023). Biologically active compounds in Scutellaria baicalensis L. callus extract: Phytochemical analysis and isolation. Foods and Raw Materials, 11(1), 172–186. https://doi.org/10.21603/2308-4057-2023-1-564. EDN: https://elibrary.ru/GYXRTF
Brunet, S., Jackson, F., & Hoste, H. (2008). Effect of sainfoin (Onobrychis viciifolia) extract and condensed tannin monomers on the association of abomasum nematode larvae with fundic explants. International Journal for Parasitology, 38(7), 783–790. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2007.10.018
Butter, N. L., Dawson, J. M., Wakelin, D., & Buttery, J. (2001). Effects of dietary concentrated tannins on gastrointestinal nematodes. The Journal of Agricultural Science, 137(4), 461–469. https://doi.org/10.1017/S0021859601001605. EDN: https://elibrary.ru/EBWSJN
Castañeda Ramirez, G. S., Torres Acosta, J. F., Sandoval Castro, C. A., González Pech, G., Parra Tabla, V. E., & Mathieu, C. (2017). Is there a negative association between condensed tannin, total phenolic, and total tannin contents of tropical plant extracts and in vitro anthelmintic activity against Haemonchus contortus eggs? Parasitology Research, 116(12), 3341–3348. https://doi.org/10.1007/s00436-017-5650-4. EDN: https://elibrary.ru/MSPDIW
Chylinski, K., Athanasiadou, S., Thuer, S., Grovermann, S., Moux, S., Hoste, H., Petkevicius, S., Verver, S., Verkaik, J., & Wern, S. (2023). Reducing anthelmintic inputs in organic farming: Are smallholder ruminant farmers implementing alternative strategies to control gastrointestinal nematodes? Veterinary Parasitology, 315, Article 109864. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2022.109864. EDN: https://elibrary.ru/CGGVSC
Debela, E., Tolerō, A., Quick, L. O., & Salty, R. (2012). Condensed tannins from Sesbania sesban and Desmodium intortum as a control agent for Haemonchus contortus in goats. Tropical Animal Health and Production, 44(8), 1939–1944. https://doi.org/10.1007/s11250-012-0160-y. EDN: https://elibrary.ru/TRVCXA
Fraccelli, C., Zanzani, S. A., Gazzonis, A. L., Rizzi, R., & Manfredi, M. T. (2015). Effect of condensed tannin on natural coccidiosis infection in kids. Small Ruminant Research, 126(Suppl. 1), 19–24. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2015.01
Greiffer, L., Liebau, E., Herrmann, F. K., & Spiegler, V. (2022). Condensed tannins act as anthelmintics by increasing the rigidity of the nematode cuticle. Scientific Reports, 12(1), Article 18850. https://doi.org/10.1038/s41598-022-23566-2. EDN: https://elibrary.ru/GSHBGU
Heckendorn, F., Hering, D. A., Maurer, W., Zinsstag, J., Langhans, W., & Herzberg, H. (2006). Effects of sainfoin (Onobrychis viciifolia) silage and hay on established populations of Haemonchus contortus and Cooperia curticei in lambs. Veterinary Parasitology, 142(3–4), 293–300. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.07.014
Jamo, J., Norman, E., Dua Boakye, Y., Oppong Beko, E., Oppong Beko e S., Asari Nkansah, S., Spiegler, W., Hensel, A., Libau, E., & Agyare, K. (2022). Anthelmintic agents from African medicinal plants: A review and prospects. Evidence Based Complementary and Alternative Medicine, Article 8023866. https://doi.org/10.1155/2022/8023866
Joó, K., Trúzsi, R. L., Kálmán, C. Z., Ács, V., Jakab, S., Bába, A., et al. (2022). Evaluation of risk factors affecting strongylid egg shedding on Hungarian horse farms. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, 27, Article 100663. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2021.100663. EDN: https://elibrary.ru/XSMEZW
Kaplan, R. M., Denwood, M. J., Nielsen, M. K., Thamsborg, S. M., Torgerson, P. R., Gilleard, J. S., Dobson, R. J., Vercruysse, J., & Levecke, B. (2023). World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) guideline for diagnosing anthelmintic resistance using the faecal egg count reduction test in ruminants, horses and swine. Veterinary Parasitology, Article 109936. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2023.109936. EDN: https://elibrary.ru/DXMVTK
Klongsiriwet, K., Quijada, J., Williams, A. R., Mueller Harvey, I., Williamson, E. M., & Hoste, H. (2015). Synergistic inhibition of Haemonchus contortus exfoliation by flavonoid monomers and condensed tannins. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 5(3), 127–134. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2015.06.001
Kotiloglu, D., Acet, T., & Ozcan, K. (2020). Phytochemical profile and biological activity of a therapeutic orchid from Anatolia: Dactylorhiza romana subsp. Georgica. Food Measure, 14, 3310–3318. https://doi.org/10.1007/s11694-020-00566-2. EDN: https://elibrary.ru/EWNOGJ
Kotze, A. C., Gilleard, J. S., Doyle, S. R., & Prichard, R. K. (2020). Challenges and opportunities for the adoption of molecular diagnostics for anthelmintic resistance. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 14, 264–273. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2020.11.005. EDN: https://elibrary.ru/DHHDJD
Mahesh, M. S., & Vinod Kumar Yata (Eds.). (2024). Feed additives and supplements for ruminants. Springer Nature Singapore Pte Ltd. https://doi.org/10.1007/978-981-97-0794-2
Maurer, V., Holinger, M., Oberhensli, T., Thuer, S., Wern, S., Shepherd, F., & Athanasiadou, S. (2022). Heather (Calluna vulgaris) supplementation does not reduce the trapping capacity of Duddingtonia flagrans in the faeces of Haemonchus contortus infected lambs. Veterinary Parasitology, 302, Article 109661. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2022.109661. EDN: https://elibrary.ru/KFCFEI
Naumann, G. D., Armstrong, S. A., Lambert, B. D., Muir, J., Tedeschi, L. O., & Kottmann, M. M. (2014). Effect of molecular weight and concentration of legume condensed tannins on the inhibition of Haemonchus contortus larval migration in vitro. Veterinary Parasitology, 199(1–2), 93–98. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.09.025
Novobelsky, A., Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2011). Condensed tannins are effective against nematodes in cattle. Veterinary Parasitology, 182(2–4), 213–220. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.06.003
Pathak, A. K., Datta, N., Banerjee, S., Goswami, T. K., & Sharma, K. (2016). Effect of condensed tannin supplementation through leaf meal mixture on voluntary feed intake, immune response and worm load in sheep infected with Haemonchus contortus. Journal of Parasitic Diseases, 40(1), 100–105. https://doi.org/10.1007/s12639-014-0455-1. EDN: https://elibrary.ru/KYQGFL
Pathak, A. K., Dutta Narayan, Banerjee, P. S., Pattanaik, A. K., & Sharma, K. (2013). Influence of dietary supplementation of condensed tannins through leaf meal mixture on intake, nutrient utilization and performance of Haemonchus contortus infected sheep. Asian Australasian Journal of Animal Sciences (AJAS), 26(10), 1446–1458. https://doi.org/10.5713/ajas.2013.13066
Porter, L. D. (1988). Flavens and proanthocyanidins. In D. B. Harborne (Ed.), Flavonoids (pp. 21–62). Springer. https://doi.org/10.1007/978-1-4899-2913-6_2
Shea, E., Trofimou, J. A., & Constabel, S. (2017). An improved butanol HCl assay for the quantitative determination of water soluble, acetone:methanol soluble, and insoluble proanthocyanidins (condensed tannins). Plant Methods, 13, Article 63. https://doi.org/10.1186/s13007-017-0213-3. EDN: https://elibrary.ru/ALSBSQ
Shepherd, F., Houdijk, J. G., Hylinski, S., Hutchings, M. R., Kelly, R. F., Macrae, A., Maurer, V., Salminen, J., Engström, M. T., & Athanasiadou, S. (2024). Feeding heather (Calluna vulgaris) to Teladorsagia circumcincta infected lambs reduces parasitism but may have detrimental effects on performance. Veterinary Parasitology, 303, Article 106066. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2024.106066
Spiegler, V. (2020). Anthelmintic A type procyanidins and further characterization of the phenolic composition of Paullinia pinnata root extract. Molecules, 25(10), Article 2287. https://doi.org/10.3390/molecules25102287. EDN: https://elibrary.ru/BBDEBO
Spiegler, V., Hensel, A., Seggewiss, J., Lubisch, M., & Liebau, E. (2017). Transcriptome analysis reveals molecular anthelmintic effects of procyanidins in C. elegans. Public Library of Science ONE, 12(9), Article e0184656. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0184656
Spiegler, V., Sendker, J., Petereit, F., Liebau, E., & Hensel, A. (2015). Fractionation of a Combretum mucronatum leaf extract with anthelmintic activity: Oligomeric procyanidins as active principle. Molecules, 20(8), 14810–14832. https://doi.org/10.3390/molecules200814810
Spiegler, W., Liebau, E., Peppler, K., Raue, K., Wern, S., Strube, K., Heckendorn, F., Aguiare, K., Stark, T., Hofmann, T., & Hensel, A. (2016). Hydroalcoholic extract from the roots of Paullinia pinnata L. has anthelmintic activity against free living and parasitic nematodes. Planta Medica, 82, 1173–1179. https://doi.org/10.1055/s-0042-108209
Tibe, O., Sutherland, I. A., Lesperance, L., & Harding, D. R. K. (2013). Effects of purified condensed tannins from forage plants from Botswana on free living stages of gastrointestinal nematode parasites in livestock. Veterinary Parasitology, 197(1–2), 160–167. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.07.004
Tong, Z., He, W., Fan, H., & Guo, A. (2022). Biological function of plant tannin and its application in animal health. Frontiers in Veterinary Science, 8, Article 803657. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.803657. EDN: https://elibrary.ru/ACJQEF
Torres Acosta, J. F. J., Sandoval Castro, C. A., Muller Harvey, I., Sotiraki, S., Luvandini, H., Tamsborg, S. M., & Terrill, T. H. (2015). Tannin containing legumes as a model for nutraceuticals against digestive parasites in livestock. Veterinary Parasitology, 212(1–2), 5–17. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2015.06.026
Wang, Y., McAllister, T. A., & Acharya, S. (2015). Condensed tannins in sainfoin: Composition, concentration and effect on nutritional and forage value of sainfoin forage. Crop Science, 55(1), 13–22. https://doi.org/10.2135/cropsci2014.07.0489
Werner, S., Isensee, A., Maurer, W., Perler, E., Dreweck, A., & Heckendorn, F. (2013). Integrated control of gastrointestinal nematodes in lambs using bioactive feed×breed approach. Veterinary Parasitology, 198(3–4), 298–304. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.09.021
Williams, A. R., Friganas, S., Ramsay, A., Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2014). Direct anthelmintic activity of condensed tannins from different plant sources against Ascaris suum. PLoS ONE, 9(5), Article e97053. Erratum in PLoS ONE, 2014, 9(6), Article e99738. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0097053
Williams, A. R., Ropiak, H. M., Friganas, S., Desruys, O., Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2014). Evaluation of the anthelmintic activity of medicinal plant extracts and purified condensed tannins against free living and parasitic stages of Oesophagostomum dentatum. Parasite Vectors, 7(1), Article 518. https://doi.org/10.1186/s13071-014-0518-2. EDN: https://elibrary.ru/PHCREI
Williams, A. R., Ramsay, A., Hansen, T. W., Ropiak, H. M., Meyer, H., Neusum, Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2015). Anthelmintic activity of trans cinnamic aldehyde and A and B type proanthocyanidins from cinnamon (Cinnamomum verum). Scientific Reports, 5, Article 14791. https://doi.org/10.1038/srep14791
Zafar, I., Sarwar, M., Jabbar, A., Ahmed, Sh., Nisa, M., Sohail Sajid, M., Nisar Khan, M., Aftab Mufti, K., & Yasin, M. (2007). Direct and indirect anthelmintic action of condensed tannins on sheep. Veterinary Parasitology, 144(1–2), 125–131. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.09.035
References
Pimenov, I. A., Varlamova, A. I., Afanasyev, A. D., & Odoevskaya, I. M. (2024). Analysis of resistance in parasitic nematodes Haemonchus contortus to benzimidazole anthelmintic drugs using loop isothermal amplification (PCR). Russian Journal of Parasitology, 18(2), 170–178. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2024-18-2-170-178. EDN: https://elibrary.ru/XOQIXI
Arkhipov, I. A. (2009). Anthelmintics: Pharmacology and application. Typography of the Russian Academy of Agricultural Sciences. ISBN: 978-5-85941-305-8. EDN: https://elibrary.ru/QLTSHX
Demkina, O. V. (2025). Efficacy of combined therapy with fenbendazole and Bacillus amyloliquefaciens in the treatment of strongylatosis in horses. Russian Journal of Parasitology, 19(1), 108–117. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2025-19-1-108-117. EDN: https://elibrary.ru/VLXZMY
Zhdanova, O. B., Chasovskikh, O. V., & Uspensky, A. V. (2024). The effect of experimental T. pseudospiralis invasion on the spleen morphology of chickens (Gallus domesticus). Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(3), 167–185. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-3-1155. EDN: https://elibrary.ru/IZOLXI
Zhuchenko, N. S. (2025). The most effective methods for assessing the resistance of parasitic disease agents in small ruminants to anthelmintic drugs. Veterinary Doctor, (1), 109–118. https://doi.org/10.33632/1998-698X_2025_1_109. EDN: https://elibrary.ru/JOELVG
Frolova, A. S., Milentyeva, A. S., Fedorova, A. M., Asyakina, L. K., & Prosekov, A. Yu. (2024). Safety assessment of several plant metabolites — promising geroprotectors in an in vivo study. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 16(3), 64–91. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2024-16-3-1146. EDN: https://elibrary.ru/AATNBO
Panova, O. A., Arkhipov, I. A., Baranova, M. V., & Khrustalev, A. V. (2022). The problem of anthelmintic resistance in horse breeding. Russian Journal of Parasitology, 16(2), 230–242. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-2-230-242. EDN: https://elibrary.ru/RWWNAG
Kokolova, M. L., Gavrilieva, L. Yu., Pribylykh, E. I., & Popova, N. V. (2024). Prevention and treatment of parasitic diseases in herd horses at the beginning of the cold season in Yakutia. Veterinary Medicine and Feeding, (2), 35–39. https://doi.org/10.30917/attvk-1814-9588-2024-2-8. EDN: https://elibrary.ru/NNOJJG
Radionov, A. V., & Arkhipov, I. A. (2010). Distribution of nematodoses in cattle under different housing technologies in Russia. Russian Journal of Parasitology, (4), 54–58. EDN: https://elibrary.ru/NEETIV
Safiullin, R. T., & Khromov, K. A. (2009). Damage caused by mixed invasion in cows and young cattle due to fascioliasis and digestive tract strongylates. Russian Journal of Parasitology, (2), 81–85. EDN: https://elibrary.ru/KVTEAZ
Athanasiadou, S., Kyriazakis, I., Jackson, F., & Coop, R. L. (2001). Direct anthelmintic effects of condensed tannins towards different gastrointestinal nematodes of sheep: in vitro and in vivo studies. Veterinary Parasitology, 99(3), 205–219. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(01)00467-8. EDN: https://elibrary.ru/AQZYYF
Athanasiadou, S., Kyriazakis, I., Jackson, F., & Coop, R. L. (2000). Effects of long-term feeding of condensed tannins to sheep infected with Trichostrongylus colubriformis. International Journal of Parasitology, 30(9), 1025–1033. https://doi.org/10.1016/s0020-7519(00)00083-7
Baltrušis, A., Claude, L., Halvarsson, P., Mikko, S., & Höglund, J. (2021). Using droplet digital PCR for the detection of hco-acr-8b levamisole resistance marker in H. contortus. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 15, 168–176. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2021.03.002. EDN: https://elibrary.ru/IGZDBX
Milentyeva, I. S., Fedorova, A. M., Larichev, T. A., & Altshuler, O. G. (2023). Biologically active compounds in Scutellaria baicalensis L. callus extract: Phytochemical analysis and isolation. Foods and Raw Materials, 11(1), 172–186. https://doi.org/10.21603/2308-4057-2023-1-564. EDN: https://elibrary.ru/GYXRTF
Brunet, S., Jackson, F., & Hoste, H. (2008). Effect of sainfoin (Onobrychis viciifolia) extract and condensed tannin monomers on the association of abomasum nematode larvae with fundic explants. International Journal for Parasitology, 38(7), 783–790. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2007.10.018
Butter, N. L., Dawson, J. M., Wakelin, D., & Buttery, J. (2001). Effects of dietary concentrated tannins on gastrointestinal nematodes. The Journal of Agricultural Science, 137(4), 461–469. https://doi.org/10.1017/S0021859601001605. EDN: https://elibrary.ru/EBWSJN
Castañeda Ramirez, G. S., Torres Acosta, J. F., Sandoval Castro, C. A., González Pech, G., Parra Tabla, V. E., & Mathieu, C. (2017). Is there a negative association between condensed tannin, total phenolic, and total tannin contents of tropical plant extracts and in vitro anthelmintic activity against Haemonchus contortus eggs? Parasitology Research, 116(12), 3341–3348. https://doi.org/10.1007/s00436-017-5650-4. EDN: https://elibrary.ru/MSPDIW
Chylinski, K., Athanasiadou, S., Thuer, S., Grovermann, S., Moux, S., Hoste, H., Petkevicius, S., Verver, S., Verkaik, J., & Wern, S. (2023). Reducing anthelmintic inputs in organic farming: Are smallholder ruminant farmers implementing alternative strategies to control gastrointestinal nematodes? Veterinary Parasitology, 315, Article 109864. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2022.109864. EDN: https://elibrary.ru/CGGVSC
Debela, E., Tolerō, A., Quick, L. O., & Salty, R. (2012). Condensed tannins from Sesbania sesban and Desmodium intortum as a control agent for Haemonchus contortus in goats. Tropical Animal Health and Production, 44(8), 1939–1944. https://doi.org/10.1007/s11250-012-0160-y. EDN: https://elibrary.ru/TRVCXA
Fraccelli, C., Zanzani, S. A., Gazzonis, A. L., Rizzi, R., & Manfredi, M. T. (2015). Effect of condensed tannin on natural coccidiosis infection in kids. Small Ruminant Research, 126(Suppl. 1), 19–24. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2015.01
Greiffer, L., Liebau, E., Herrmann, F. K., & Spiegler, V. (2022). Condensed tannins act as anthelmintics by increasing the rigidity of the nematode cuticle. Scientific Reports, 12(1), Article 18850. https://doi.org/10.1038/s41598-022-23566-2. EDN: https://elibrary.ru/GSHBGU
Heckendorn, F., Hering, D. A., Maurer, W., Zinsstag, J., Langhans, W., & Herzberg, H. (2006). Effects of sainfoin (Onobrychis viciifolia) silage and hay on established populations of Haemonchus contortus and Cooperia curticei in lambs. Veterinary Parasitology, 142(3–4), 293–300. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.07.014
Jamo, J., Norman, E., Dua Boakye, Y., Oppong Beko, E., Oppong Beko e S., Asari Nkansah, S., Spiegler, W., Hensel, A., Libau, E., & Agyare, K. (2022). Anthelmintic agents from African medicinal plants: A review and prospects. Evidence Based Complementary and Alternative Medicine, Article 8023866. https://doi.org/10.1155/2022/8023866
Joó, K., Trúzsi, R. L., Kálmán, C. Z., Ács, V., Jakab, S., Bába, A., et al. (2022). Evaluation of risk factors affecting strongylid egg shedding on Hungarian horse farms. Veterinary Parasitology: Regional Studies and Reports, 27, Article 100663. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2021.100663. EDN: https://elibrary.ru/XSMEZW
Kaplan, R. M., Denwood, M. J., Nielsen, M. K., Thamsborg, S. M., Torgerson, P. R., Gilleard, J. S., Dobson, R. J., Vercruysse, J., & Levecke, B. (2023). World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) guideline for diagnosing anthelmintic resistance using the faecal egg count reduction test in ruminants, horses and swine. Veterinary Parasitology, Article 109936. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2023.109936. EDN: https://elibrary.ru/DXMVTK
Klongsiriwet, K., Quijada, J., Williams, A. R., Mueller Harvey, I., Williamson, E. M., & Hoste, H. (2015). Synergistic inhibition of Haemonchus contortus exfoliation by flavonoid monomers and condensed tannins. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 5(3), 127–134. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2015.06.001
Kotiloglu, D., Acet, T., & Ozcan, K. (2020). Phytochemical profile and biological activity of a therapeutic orchid from Anatolia: Dactylorhiza romana subsp. Georgica. Food Measure, 14, 3310–3318. https://doi.org/10.1007/s11694-020-00566-2. EDN: https://elibrary.ru/EWNOGJ
Kotze, A. C., Gilleard, J. S., Doyle, S. R., & Prichard, R. K. (2020). Challenges and opportunities for the adoption of molecular diagnostics for anthelmintic resistance. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance, 14, 264–273. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2020.11.005. EDN: https://elibrary.ru/DHHDJD
Mahesh, M. S., & Vinod Kumar Yata (Eds.). (2024). Feed additives and supplements for ruminants. Springer Nature Singapore Pte Ltd. https://doi.org/10.1007/978-981-97-0794-2
Maurer, V., Holinger, M., Oberhensli, T., Thuer, S., Wern, S., Shepherd, F., & Athanasiadou, S. (2022). Heather (Calluna vulgaris) supplementation does not reduce the trapping capacity of Duddingtonia flagrans in the faeces of Haemonchus contortus infected lambs. Veterinary Parasitology, 302, Article 109661. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2022.109661. EDN: https://elibrary.ru/KFCFEI
Naumann, G. D., Armstrong, S. A., Lambert, B. D., Muir, J., Tedeschi, L. O., & Kottmann, M. M. (2014). Effect of molecular weight and concentration of legume condensed tannins on the inhibition of Haemonchus contortus larval migration in vitro. Veterinary Parasitology, 199(1–2), 93–98. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.09.025
Novobelsky, A., Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2011). Condensed tannins are effective against nematodes in cattle. Veterinary Parasitology, 182(2–4), 213–220. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.06.003
Pathak, A. K., Datta, N., Banerjee, S., Goswami, T. K., & Sharma, K. (2016). Effect of condensed tannin supplementation through leaf meal mixture on voluntary feed intake, immune response and worm load in sheep infected with Haemonchus contortus. Journal of Parasitic Diseases, 40(1), 100–105. https://doi.org/10.1007/s12639-014-0455-1. EDN: https://elibrary.ru/KYQGFL
Pathak, A. K., Dutta Narayan, Banerjee, P. S., Pattanaik, A. K., & Sharma, K. (2013). Influence of dietary supplementation of condensed tannins through leaf meal mixture on intake, nutrient utilization and performance of Haemonchus contortus infected sheep. Asian Australasian Journal of Animal Sciences (AJAS), 26(10), 1446–1458. https://doi.org/10.5713/ajas.2013.13066
Porter, L. D. (1988). Flavens and proanthocyanidins. In D. B. Harborne (Ed.), Flavonoids (pp. 21–62). Springer. https://doi.org/10.1007/978-1-4899-2913-6_2
Shea, E., Trofimou, J. A., & Constabel, S. (2017). An improved butanol HCl assay for the quantitative determination of water soluble, acetone:methanol soluble, and insoluble proanthocyanidins (condensed tannins). Plant Methods, 13, Article 63. https://doi.org/10.1186/s13007-017-0213-3. EDN: https://elibrary.ru/ALSBSQ
Shepherd, F., Houdijk, J. G., Hylinski, S., Hutchings, M. R., Kelly, R. F., Macrae, A., Maurer, V., Salminen, J., Engström, M. T., & Athanasiadou, S. (2024). Feeding heather (Calluna vulgaris) to Teladorsagia circumcincta infected lambs reduces parasitism but may have detrimental effects on performance. Veterinary Parasitology, 303, Article 106066. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2024.106066
Spiegler, V. (2020). Anthelmintic A type procyanidins and further characterization of the phenolic composition of Paullinia pinnata root extract. Molecules, 25(10), Article 2287. https://doi.org/10.3390/molecules25102287. EDN: https://elibrary.ru/BBDEBO
Spiegler, V., Hensel, A., Seggewiss, J., Lubisch, M., & Liebau, E. (2017). Transcriptome analysis reveals molecular anthelmintic effects of procyanidins in C. elegans. Public Library of Science ONE, 12(9), Article e0184656. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0184656
Spiegler, V., Sendker, J., Petereit, F., Liebau, E., & Hensel, A. (2015). Fractionation of a Combretum mucronatum leaf extract with anthelmintic activity: Oligomeric procyanidins as active principle. Molecules, 20(8), 14810–14832. https://doi.org/10.3390/molecules200814810
Spiegler, W., Liebau, E., Peppler, K., Raue, K., Wern, S., Strube, K., Heckendorn, F., Aguiare, K., Stark, T., Hofmann, T., & Hensel, A. (2016). Hydroalcoholic extract from the roots of Paullinia pinnata L. has anthelmintic activity against free living and parasitic nematodes. Planta Medica, 82, 1173–1179. https://doi.org/10.1055/s-0042-108209
Tibe, O., Sutherland, I. A., Lesperance, L., & Harding, D. R. K. (2013). Effects of purified condensed tannins from forage plants from Botswana on free living stages of gastrointestinal nematode parasites in livestock. Veterinary Parasitology, 197(1–2), 160–167. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.07.004
Tong, Z., He, W., Fan, H., & Guo, A. (2022). Biological function of plant tannin and its application in animal health. Frontiers in Veterinary Science, 8, Article 803657. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.803657. EDN: https://elibrary.ru/ACJQEF
Torres Acosta, J. F. J., Sandoval Castro, C. A., Muller Harvey, I., Sotiraki, S., Luvandini, H., Tamsborg, S. M., & Terrill, T. H. (2015). Tannin containing legumes as a model for nutraceuticals against digestive parasites in livestock. Veterinary Parasitology, 212(1–2), 5–17. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2015.06.026
Wang, Y., McAllister, T. A., & Acharya, S. (2015). Condensed tannins in sainfoin: Composition, concentration and effect on nutritional and forage value of sainfoin forage. Crop Science, 55(1), 13–22. https://doi.org/10.2135/cropsci2014.07.0489
Werner, S., Isensee, A., Maurer, W., Perler, E., Dreweck, A., & Heckendorn, F. (2013). Integrated control of gastrointestinal nematodes in lambs using bioactive feed×breed approach. Veterinary Parasitology, 198(3–4), 298–304. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.09.021
Williams, A. R., Friganas, S., Ramsay, A., Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2014). Direct anthelmintic activity of condensed tannins from different plant sources against Ascaris suum. PLoS ONE, 9(5), Article e97053. Erratum in PLoS ONE, 2014, 9(6), Article e99738. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0097053
Williams, A. R., Ropiak, H. M., Friganas, S., Desruys, O., Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2014). Evaluation of the anthelmintic activity of medicinal plant extracts and purified condensed tannins against free living and parasitic stages of Oesophagostomum dentatum. Parasite Vectors, 7(1), Article 518. https://doi.org/10.1186/s13071-014-0518-2. EDN: https://elibrary.ru/PHCREI
Williams, A. R., Ramsay, A., Hansen, T. W., Ropiak, H. M., Meyer, H., Neusum, Müller Harvey, I., & Tamsborg, S. M. (2015). Anthelmintic activity of trans cinnamic aldehyde and A and B type proanthocyanidins from cinnamon (Cinnamomum verum). Scientific Reports, 5, Article 14791. https://doi.org/10.1038/srep14791
Zafar, I., Sarwar, M., Jabbar, A., Ahmed, Sh., Nisa, M., Sohail Sajid, M., Nisar Khan, M., Aftab Mufti, K., & Yasin, M. (2007). Direct and indirect anthelmintic action of condensed tannins on sheep. Veterinary Parasitology, 144(1–2), 125–131. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.09.035
Copyright (c) 2026 Elena M. Maltseva, Lyudmila G. Pinchuk, Ramazan M. Akbaev
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
