Изучение микробиома почвы на территории ядомогильника в Джизакской области Узбекистана

Ключевые слова: почва, полигон, ядовитые вещества, микробный пейзаж, посевы, бактерии, грибы, осаждаемость, тяжелая почва, физические свойства

Аннотация

Обоснование. Полигон захоронения ядохимикатов в Джизакской области Республики Узбекистан, занимающий 12,7 гектаров площади, оказывает длительное техногенное воздействие на почвы, что приводит к нарушению их микробиологической и агрохимической структуры. Микроорганизмы и почвенные ферменты чувствительно реагируют на эти загрязнения, следовательно, их численность и активность служат надёжными биоиндикаторами экологического состояния почвенных ресурсов. Экспериментально было показано резкое снижение микробной численности, ферментативной активности и плодородия почв на исследованных загрязнённых участках, что подчёркивает необходимость биологической ремедиации и агрохимической коррекции для восстановления почвенного биоценоза и повышения устойчивости экосистем в целом.

Изучение микобиоту загрязненных почв пестицидам позволяют оценить и, направлено на оценку влияния этих химикатов на состав и функции почвенных микроорганизмов, что критически важно для поддержания здоровья почвы и экосистемы в целом. Такие исследования проводятся с использованием микробиологических, молекулярных методов, позволяющих выявить качественные и количественные показатели, метаболической активности бактерий, грибов и других почвенных организмов, а также оценить их роль в разложении пестицидов и влиянии на плодородие почвы. 

Цель. Оценка микробиологического, ферментативного и агрохимического состояния почв различных участков полигона ядохимикатов для выявления степени техногенного воздействия и необходимости проведения мероприятий по биологической ремедиации.

Материалы и методы. В ходе исследования были проанализированы 5 почвенных образцов, отобранных в различных участках полигона и прилегающей территории. Для микробиологического анализа из образцов готовили водные суспензии (10 г/100 мл), которые инкубировали при 30 °С в течение 24 часов. Микроорганизмы (бактерии, грибы, актиномицеты) культивировали на элективных питательных средах (нутриент агар (NA) и среда Сабуро (Hi Media), среда Чапека) при разведениях почвенной суспензии 10¹–10⁷. Рост колоний каждого класса микроорганизмов фиксировали каждые 12 часов с определением их численности и морфологии.

Физические свойства почв (сыпучесть, осаждаемость, однородность, цвет) оценивались визуально. Контрольным образцом служила почва из дендропарковой зоны Института микробиологии АН РУз (Ташкент).

Ферментативную активность почвенных образцов (каталазы, пероксидазы, полифенолоксидазы, инвертазы) определяли газометрическим и колориметрическим методами по стандартным протоколам (1, c 41; 14).

Агрохимические показатели (pH, гумус, доступные формы фосфора, калия, обменные катионы, степень засоления) определялись по ГОСТам и методическим указаниям (Ташкент, 2005), с использованием потенциометрии, колориметрии, фотометрии и гравиметрического анализа.

Результаты. Микробиологический анализ показал значительное снижение общей численности бактерий, грибов и актиномицетов в почвах полигона по сравнению с контрольной пробой (4905 × 10⁵ КОЕ/г). Минимальные значения зафиксированы в центральной части полигона (25 × 10⁵ КОЕ/г), что связано с неблагоприятными физико-химическими свойствами почв. Почва восточной части показала большую численность (118 × 10⁵ КОЕ/г), среди всех загрязнённых участков, из которых количество бактерий – 113 × 10⁵, грибов – 2 × 10⁵, актиномицетов – 3 × 10⁵), однако, физическое состояние этой почвы свидетельствует о нарушении почвенной структуры. Почвы западной и северной части содержали низкую численность бактерий (36 × 10⁵ и 43 × 10⁵ КОЕ/г соответственно), на расстоянии 2 км от полигона число бактерий составила (40 × 10⁵ КОЕ/г), актиномицетов -1, грибы вовсе не были обнаружены, что указывает на длительное влияние загрязнений за пределами полигона.

Ферментативная активность почвы (каталаза, полифенолоксидаза, пероксидаза, инвертаза) также была значительно снижена во всех загрязнённых участках полигона, что свидетельствует о нарушении метаболических процессов в микробном сообществе. Пероксидазная активность больше обнаружена в центре полигона и северной части, полифенолоксидаза демонстрирует аналогичное угнетение – от 2,4 до 4,3 мг бензох/20 г·4 ч по сравнению с контрольным вариантом 6,8 ПФО – 6,8 мг бензох/20 гпочвы/4ч. Особенно низкие значения отмечены в центре полигона (2,4 мг бензох/20 гпочвы/4ч) и на севере (3,0 ПФО – 6,8 мг бензох/20 гпочвы/4ч), что может свидетельствовать о нарушении метаболизма ароматических соединений фенольной природы почвенной микробиоты. Также, инвертазная активность оказалась существенно низкой в северной части полигона, что свидетельствует о резком снижении углеводного обмена в почве и, вероятно, о дефиците количества активных сапротрофов. В образце 2,0 км от полигона, наблюдается увеличение ферментативной активности.

Агрохимический анализ выявил, что почва южной и западной части содержит больше гумуса, углерода, но испытывают дефицит калия. Восточная, северная части обеднены по всем показателям: N-NO₃ (22,9–69,7 мг/кг), подвижная форма P₂O₅ (18,0–34,0 мг/кг) и калия K₂O (252,8–409,4 мг/кг). Наилучшие показатели выявлены в южной, наихудшие – в восточной и северной частях полигона.

Заключение. Проведённое исследование выявило выраженное техногенное угнетение микробиологической, ферментативной активности и агрохимической структуры почв на территории полигона захоронения ядохимикатов. Наиболее деградированы северная, восточная и центральные зоны. Южная и западная части сохранили частичный потенциал, но требуют коррекции. Полученные данные подтверждают необходимость срочных мер по биоремедиации и агрохимическому восстановлению загрязнённых почв.

Установлено, что число почвенных микроорганизмов и активности ферментов может служить чувствительным биоиндикатором экологического состояния почв могильника ядовитых веществ Форишского района Джизакской области. Выявленные изменения указывают на выраженное техногенное угнетение ферментативной системы микробного сообщества полигона. Это подчёркивает актуальность проведения мероприятий по биологической биоремедиации, включая восстановление численности микробного сообщества и ферментативного потенциала, как важного показателя устойчивости почвенных экосистем.

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Zakhro R. Akhmedova, Институт микробиологии Академии наук Республики Узбекистан

д.б.н., профессор, академик АН Турон, заведующая лабораторией «Природоохранных биотехнологий»

Tulkin E. Shonakhunov, Институт микробиологии Академии наук Республики Узбекистан

PhD, старший научный сотрудник лаборатории «Природоохранных биотехнологий»

Abdulaziz A. Ibragimov, Институт микробиологии Академии наук Республики Узбекистан

базовый докторант

Ziyoda T. Khamraeva, Институт микробиологии Академии наук Республики Узбекистан

младший научный сотрудник лаборатории «Природоохранных биотехнологий»

Munavvar A. Yakhyayeva, Институт микробиологии Академии наук Республики Узбекистан

младший научный сотрудник лаборатории «Природоохранных биотехнологий»

Литература

Галстян, А. Ш. (1983). Итоги изучения биологической активности почв. В Итоги научно исследовательских работ по генезису, биохимии, мелиорации, агрохимии и эрозии почв (с. 41–59). Ереван.

ГОСТ 17.5.4.02 84. Охрана природы. Рекультивация земель. Метод измерения и расчёта суммы токсичных солей во вскрышных и вмещающих породах.

ГОСТ 26205 91. Методы определения подвижного фосфора и калия по Чирикову и К. Мачигину.

ГОСТ 26213 91. Почвы. Методы определения органического вещества.

ГОСТ 26487 85. Почвы. Определение обменного кальция и обменного (подвижного) магния методами ЦИНАО.

ГОСТ 27753.3 88. Грунты тепличные. Метод определения рН водной суспензии.

ГОСТ Р 59540 2021. Грунты. Методы лабораторного определения степени засолённости.

Иркитова, А. Н., Дудник, Д. Е., Малкова, А. В., & Хлопова, К. В. (2025). Оценка биобезопасности природных штаммов Bacillus spp., обладающих ценными биотехнологическими свойствами. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 17(3), 188–207. https://doi.org/10.12731/2658 6649-2025-17-3-1186. EDN: https://elibrary.ru/DSUPHE

Карагiна, Л. А., & Мiхайлоўская, Н. А. (1986). Вызначэнне актыўнасцi полiфенолаксiдазы i пераксiдазы у глебе. Весцi Акадэмii навук БССР. Серыя сельскагаспадарчых навук, (2), 40–41.

Ковриго, В. П., Кауричев, И. С., & Бурлакова, Л. М. (2000). Почвоведение с основами геологии. Москва: Колос. 416 с. ISBN: 5 10 003135 2. EDN: https://elibrary.ru/QYVLSJ

Котенко, М. Е., Сорокин, А. Е., Савич, В. И., Подволоцкая, Г. В., & Мохаммади, Ш. (2020). Изменение засоления почв во времени и в пространстве. Плодородие, (1), 43–48. https://doi.org/10.25680/S19948603.2020.112.13. EDN: https://elibrary.ru/CYZGPH

Академия наук УзССР. (1999). Методы агрохимических, агрофизических и микробиологических исследований в поливных хлопковых районах. Ташкент.

Лаборатория массовых анализов. (2005). Методы химических анализов почвы, применяемые в лаборатории массовых анализов. Ташкент.

Михайликова, В. В., & Стребкова, Н. С. (2023). Динамика применения пестицидов в Российской Федерации. Агрохимия, (9), 37–41. https://doi.org/10.31857/S0002188123090089. EDN: https://elibrary.ru/VYIKSQ

Хазиев, Ф. Х. (1990). Методы почвенной энзимологии. Москва: Наука. 186 с. ISBN: 5 02 003454 1. EDN: https://elibrary.ru/VYSCSV

Хазиев, Ф. Х., Агафарова, Я. М., & Гулько, А. Е. (1988). Ускоренный колориметрический метод определения инвертазной активности почв. Почвоведение, (11), 119–12.

Orgiazzi, A., Bardgett, R. D., Barrios, E., Behan Pelletier, V., Briones, M. J. I., Chotte, J. L., De Deyn, G. B., Eggleton, P., Fierer, N., Fraser, T., Hedlund, K., Jeffery, S., Johnson, N. C., Jones, A., et al. (2016). Global Soil Biodiversity Atlas.

Belovezhets, L. A., Levchuk, A. A., & Pristavka, E. O. (2023). Prospects for application of microorganisms in bioremediation of soils contaminated with pesticides. Journal of Environmental Science and Health, Part B, 59(1), 15–20. https://doi.org/10.1080/03601234.2023.2281197. EDN: https://elibrary.ru/VPFGJJ

Ewere, E. E., White, S., Mauleon, R., & Benkendorff, K. (2024). Soil microbial communities and degradation of pesticides in greenhouse effluent through a woodchip bioreactor. Environmental Pollution, 359, 124561. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2024.124561

Walder, F., Schmid, M. W., Riedo, J., Valzano Held, A. Y., Banerjee, S., Büchi, L., Bucheli, T. D., & van der Heijden, M. G. A. (2022). Soil microbiome signatures are associated with pesticide residues in arable landscapes. Soil Biology and Biochemistry, 174, 108830. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2022.108830

Kuypers, M. M. M., Marchant, H. K., & Kartal, B. (2018). The microbial nitrogen cycling network. Nature Reviews Microbiology, 16(5), 263–276. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2018.9. EDN: https://elibrary.ru/VGWXWK

Swaine, M., Bergna, A., Oyserman, B., Vasileiadis, S., Karas, P. A., Screpanti, C., & Karpouzas, D. G. (2025). Impact of pesticides on soil health: Identification of key soil microbial indicators for ecotoxicological assessment strategies through meta analysis. FEMS Microbiology Ecology, 101(6), fiaf052. https://doi.org/10.1093/femsec/fiaf052

Hvězdová, M., Kosubová, P., Košíková, M., Scherr, K. E., Šimek, Z., Brodský, L., Šudoma, M., Škulcová, L., Sáňka, M., Svobodová, M., Krkošková, L., Vašíčková, J., Neuwirthová, N., Bielská, L., & Hofman, J. (2018). Currently and recently used pesticides in Central European arable soils. Science of the Total Environment, 613–614, 361–370. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2017.09.049

Riedo, J., Wettstein, F. E., Rösch, A., Herzog, C., Banerjee, S., Büchi, L., Charles, R., Wächter, D., Martin Laurent, F., Bucheli, T. D., Walder, F., & van der Heijden, M. G. A. (2021). Widespread occurrence of pesticides in organically managed agricultural soils – the ghost of a conventional agricultural past? Environmental Science & Technology, 55(5), 2919–2928. https://doi.org/10.1021/acs.est.0c06405. EDN: https://elibrary.ru/POZEMG

Rodríguez Eugenio, N., McLaughlin, M., & Pennock, D. (2018). Soil Pollution: A Hidden Reality. Rome: FAO. 142 p.

Bender, S. F., Wagg, C., & van der Heijden, M. G. A. (2016). An underground revolution: Biodiversity and soil ecological engineering for agricultural sustainability. Trends in Ecology & Evolution, 31(6), 440–452. https://doi.org/10.1016/j.tree.2016.02.016

Silva, V., Mol, H. G. J., Zomer, P., Tienstra, M., Ritsema, C. J., & Geissen, V. (2019). Pesticide residues in European agricultural soils – a hidden reality unfolded. Science of the Total Environment, 653, 1532–1545. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.10.441. EDN: https://elibrary.ru/TLGKDA

References

Galstyan, A. Sh. (1983). Results of studying the biological activity of soils. In Results of research works on the genesis, biochemistry, reclamation, agrochemistry and erosion of soils (pp. 41–59). Yerevan.

GOST 17.5.4.02 84. Nature protection. Land reclamation. Method for measuring and calculating the amount of toxic salts in overburden and enclosing rocks.

GOST 26205 91. Methods for determining mobile phosphorus and potassium according to Chirikov and K. Machigin.

GOST 26213 91. Soils. Methods for determining organic matter.

GOST 26487 85. Soils. Determination of exchangeable calcium and exchangeable (mobile) magnesium by TsINAO methods.

GOST 27753.3 88. Greenhouse soils. Method for determining the pH of an aqueous suspension.

GOST R 59540 2021. Soils. Methods for laboratory determination of the degree of salinity.

Irkitova, A. N., Dudnik, D. E., Malkova, A. V., & Khlopova, K. V. (2025). Assessment of the biosafety of natural Bacillus spp. strains with valuable biotechnological properties. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 17(3), 188–207. https://doi.org/10.12731/2658 6649-2025-17-3-1186. EDN: https://elibrary.ru/DSUPHE

Karahina, L. A., & Mikhailouskaya, N. A. (1986). Determination of polyphenol oxidase and peroxidase activity in soil. Vestsi Akademii navuk BSSR. Seryya sel’skagaspadarchykh navuk, (2), 40–41.

Kovrigo, V. P., Kaurichev, I. S., & Burlakova, L. M. (2000). Soil science with the basics of geology. Moscow: Kolos. 416 p. ISBN: 5 10 003135 2. EDN: https://elibrary.ru/QYVLSJ

Kotenko, M. E., Sorokin, A. E., Savich, V. I., Podvolotskaya, G. V., & Mohammadi, Sh. (2020). Changes in soil salinity over time and space. Plodorodie, (1), 43–48. https://doi.org/10.25680/S19948603.2020.112.13. EDN: https://elibrary.ru/CYZGPH

Academy of Sciences of the UzSSR. (1999). Methods of agrochemical, agrophysical and microbiological research in irrigated cotton areas. Tashkent.

Laboratory of Mass Analyses. (2005). Methods of chemical soil analyses used in the Laboratory of Mass Analyses. Tashkent.

Mikhailikova, V. V., & Strebkova, N. S. (2023). Dynamics of pesticide use in the Russian Federation. Agrokhimiya, (9), 37–41. https://doi.org/10.31857/S0002188123090089. EDN: https://elibrary.ru/VYIKSQ

Khaziev, F. Kh. (1990). Methods of soil enzymology. Moscow: Nauka. 186 p. ISBN: 5 02 003454 1. EDN: https://elibrary.ru/VYSCSV

Khaziev, F. Kh., Agafarova, Ya. M., & Gulko, A. E. (1988). Accelerated colorimetric method for determining invertase activity in soils. Pochvovedenie, (11), 119–12.

Orgiazzi, A., Bardgett, R. D., Barrios, E., Behan Pelletier, V., Briones, M. J. I., Chotte, J. L., De Deyn, G. B., Eggleton, P., Fierer, N., Fraser, T., Hedlund, K., Jeffery, S., Johnson, N. C., Jones, A., et al. (2016). Global Soil Biodiversity Atlas.

Belovezhets, L. A., Levchuk, A. A., & Pristavka, E. O. (2023). Prospects for application of microorganisms in bioremediation of soils contaminated with pesticides. Journal of Environmental Science and Health, Part B, 59(1), 15–20. https://doi.org/10.1080/03601234.2023.2281197. EDN: https://elibrary.ru/VPFGJJ

Ewere, E. E., White, S., Mauleon, R., & Benkendorff, K. (2024). Soil microbial communities and degradation of pesticides in greenhouse effluent through a woodchip bioreactor. Environmental Pollution, 359, 124561. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2024.124561

Walder, F., Schmid, M. W., Riedo, J., Valzano Held, A. Y., Banerjee, S., Büchi, L., Bucheli, T. D., & van der Heijden, M. G. A. (2022). Soil microbiome signatures are associated with pesticide residues in arable landscapes. Soil Biology and Biochemistry, 174, 108830. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2022.108830

Kuypers, M. M. M., Marchant, H. K., & Kartal, B. (2018). The microbial nitrogen cycling network. Nature Reviews Microbiology, 16(5), 263–276. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2018.9. EDN: https://elibrary.ru/VGWXWK

Swaine, M., Bergna, A., Oyserman, B., Vasileiadis, S., Karas, P. A., Screpanti, C., & Karpouzas, D. G. (2025). Impact of pesticides on soil health: Identification of key soil microbial indicators for ecotoxicological assessment strategies through meta analysis. FEMS Microbiology Ecology, 101(6), fiaf052. https://doi.org/10.1093/femsec/fiaf052

Hvězdová, M., Kosubová, P., Košíková, M., Scherr, K. E., Šimek, Z., Brodský, L., Šudoma, M., Škulcová, L., Sáňka, M., Svobodová, M., Krkošková, L., Vašíčková, J., Neuwirthová, N., Bielská, L., & Hofman, J. (2018). Currently and recently used pesticides in Central European arable soils. Science of the Total Environment, 613–614, 361–370. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2017.09.049

Riedo, J., Wettstein, F. E., Rösch, A., Herzog, C., Banerjee, S., Büchi, L., Charles, R., Wächter, D., Martin Laurent, F., Bucheli, T. D., Walder, F., & van der Heijden, M. G. A. (2021). Widespread occurrence of pesticides in organically managed agricultural soils – the ghost of a conventional agricultural past? Environmental Science & Technology, 55(5), 2919–2928. https://doi.org/10.1021/acs.est.0c06405. EDN: https://elibrary.ru/POZEMG

Rodríguez Eugenio, N., McLaughlin, M., & Pennock, D. (2018). Soil pollution: A hidden reality. Rome: FAO. 142 p.

Bender, S. F., Wagg, C., & van der Heijden, M. G. A. (2016). An underground revolution: Biodiversity and soil ecological engineering for agricultural sustainability. Trends in Ecology & Evolution, 31(6), 440–452. https://doi.org/10.1016/j.tree.2016.02.016

Silva, V., Mol, H. G. J., Zomer, P., Tienstra, M., Ritsema, C. J., & Geissen, V. (2019). Pesticide residues in European agricultural soils – a hidden reality unfolded. Science of the Total Environment, 653, 1532–1545. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.10.441. EDN: https://elibrary.ru/TLGKDA


Опубликован
2026-02-28
Как цитировать
Akhmedova, Z., Shonakhunov, T., Ibragimov, A., Khamraeva, Z., & Yakhyayeva, M. (2026). Изучение микробиома почвы на территории ядомогильника в Джизакской области Узбекистана. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 18(1). https://doi.org/10.12731/2658-6649-2026-18-1-1401
Раздел
Экология, почвоведение и природопользование