Субстраты для выделения бактериоцинов: обзор
Аннотация
Обоснование. В связи с увеличением спроса на рыбную продукцию, запас дикой рыбы непрерывно истощается. Это приводит к высокому уровню развития аквакультуры в мире. Высокое содержание микроорганизмов в воде, в том числе патогенных, может негативно сказываться на его качестве и безопасности. Особую опасность для объектов аквакультуры представляет сальмонелла. Гидробионты могут являться носителями данной бактерии, которая, при попадании в организм человека, вызывает острую кишечную инфекцию. Это особенно важно при потреблении в пищу сырой продукции – мидии, молюски, сырья рыба. В настоящее время для борьбы с патогенными микроорганизмами используют антибиотики, негативное влияние который доказано во всем мире. В связи с чем, существует острая необходимость в поиске эффективных решений, направленных на борьбу с негативным влиянием патогенных микроорганизмов на объекты аквакультуры. Перспективным считается использование бактериоцинов, вызывающих подавление роста и гибель патогенных микроорганизмов. Эффективность пробиоитческих препаратов и бактериоцинов можно повысить за счет использования полезных штаммов бактерий, присутствующих в естественной среде обитания животных. Такой подход позволит создавать специализированные линейки пробиотических препаратов разного спектра действия (антиоксидантные, антимутагенные, ферментативные и прочие), которые будут способствовать развитию животноводства и минимизировать использование антибиотиков для лечения заболеваний бактериального характера. Для создания эффективной кормовой добавки на основе бактериоцинов в борьбе с сальмонеллой необходимо подобрать оптимальные условия культивирования новых штаммов-продуцентов для максимального выхода бактериоцинов.
Цель. Обзор и выявление потенциальных питательных сред для выращивания штаммов бактерий, присутствующих в естественной среде обитания животных, продуцирующие бактериоцины направленного действия.
Материалы и методы. В ходе исследования был применен сравнительно-аналитический метод. Информационная база сформирована на основе анализа данных, представленных в открытых научных публикациях. Поиск литературных источников проводился в реферативных и информационных базах данных, включая eLibrary, Российскую государственную библиотеку, ScienceDirect, ResearchGate, Google Scholar, National MedLine, онлайн-библиотеку Wiley и другие. В качестве поисковых запросов использовались следующие ключевые термины: «Salmonella», «сальмонелла», «бактериоцин», «bacteriocin», «субстрат», «subiectum», «штамм бактерии», «bacterial iactatio», «пробиотик», «probiotic», «пребиотик», «prebiotic», «сальмонеллез», «salmonellosis» – как в отдельности, так и в различных комбинациях. Временные ограничения при поиске не устанавливались с целью охвата максимально репрезентативного массива публикаций.
Результаты. Универсальными добавками в питательные среды для выделения бактериоцинов являются дрожжевой экстракт, пептон и глюкоза. Эти компоненты встречаются практически во всех вышеперечисленных питательных средах, что указывает на их вероятную высокую эффективность в качестве источников углерода и азота. Применение патоки, соевого жмыха, пшеничных отрубей, ферментативный раствор из лигноцеллюлозных отходов показали себя достойными субстратами с точки зрения не только производительности самих бактериоцинов, но и с точки зрения экономической эффективности субстратов. Пшеничные отруби, лигноцеллюлозные отходы, соевый шрот, патока являются вторичным сырьем. Применение вторичных продуктов и продуктов растительного происхождения, имеющих пребиотические свойства (например, зерновой ворох пшеницы ранних фаз спелости), в качестве субстратов для выделения бактериоцинов является эффективным и направлен на ресурсосбережение.
Заключение. Применение новых штаммов бактерий, выделенных из естественных сред обитания, с целью получения бактериоцинов, в аквакультуре будут способствовать развитию животноводства и минимизировать использование антибиотиков для лечения заболеваний бактериального характера.
Информация о спонсорстве. Работа проведена в рамках выполнения проекта "Разработка персонифицированных кормов нового поколения с растительными и пробиотическими добавками для повышения выживаемости и улучшения здоровья рыб" (FZNE-2023-0003).
EDN: DOOMVZ
Скачивания
Литература
Продовольственная и сельскохозяйственная организация Объединённых Наций (ФАО). Официальный сайт. Получено с: https://www.fao.org/home/ru
Федеральная служба государственной статистики. Официальный сайт. Получено с: https://rosstat.gov.ru/?ref=genderguides.ru
Петрова, Ю. В., Любомирова, В. Н., & Либерман, А. А. (2020). Характеристика химического состава рыб. Journal of Applied Microbiology, 129(1), 116–136. https://doi.org/10.1111/jam.14628. EDN: https://elibrary.ru/WIZXQM
Robertson, P. A. W., O’Dowd, C., Burrells, C., Williams, P., & Austin, B. (2000). Use of Carnobacterium sp. as a probiotic for Atlantic salmon (Salmo salar L.) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum). Aquaculture, 185(3–4), 235–243. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00349-X. EDN: https://elibrary.ru/AFGRAB
Loo, K. Y., et al. (2020). Incidence of antibiotic resistance in Vibrio spp. Reviews in Aquaculture, 12(4), 2590–2608. https://doi.org/10.1111/raq.12460. EDN: https://elibrary.ru/CSMTBP
Simons, A., Alhanout, K., & Duval, R. E. (2020). Bacteriocins, antimicrobial peptides from bacteria origin: Overview of their biology and their implementation against multidrug resistant bacteria. Microorganisms, 8(5), 639. https://doi.org/10.3390/microorganisms8050639. EDN: https://elibrary.ru/JEJKWS
Червоткина, Д. Р., & Борисова, А. В. (2022). Антимикробные препараты природного происхождения: обзор свойств и перспективы применения. Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология, 12(2), 254–267. https://doi.org/10.21285/2227-2925-2022-12-2-254-267. EDN: https://elibrary.ru/EKZZBE
Чижаева, А. В., et al. (2021). Преимущества использования пробиотиков на основе молочнокислых бактерий в аквакультуре. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований, (9), 12–16. Получено с: https://applied-research.ru/ru/article/view?id=13265. EDN: https://elibrary.ru/YRWNEC
Боствироннуа, К., & Шлейфер, Д. (2020). Пробиотики работают даже в присутствии антибиотиков. Комбикорма, (1), 109–112. Получено с: https://kombi-korma.ru/sites/default/files/2/01_20/2020_01_109-112.pdf. EDN: https://elibrary.ru/CCQTUE
Nayak, A., et al. (2022). Potential application of bacteriocins for sustainable aquaculture. Reviews in Aquaculture, (14), 1234–1248. https://doi.org/10.1111/raq.12647. EDN: https://elibrary.ru/XSLLWO
Wei, Z., et al. (2021). A novel subtilin like lantibiotics subtilin JS 4 produced by Bacillus subtilis JS 4, and its antibacterial mechanism against Listeria monocytogenes. LWT, (142), 110993. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.110993. EDN: https://elibrary.ru/VQOPVO
Knipe, H., et al. (2021). Probiotics and competitive exclusion of pathogens in shrimp aquaculture. Reviews in Aquaculture, 13(1), 324–352. https://doi.org/10.1111/raq.12477. EDN: https://elibrary.ru/SHNWRU
Han, S. R. (2020). Bacillus subtilis inhibits viral hemorrhagic septicemia virus infection in olive flounder (Paralichthys olivaceus) intestinal epithelial cells. Viruses, 13(1), 28. https://doi.org/10.3390/v13010028. EDN: https://elibrary.ru/FDQRZZ
Ye, P. A., et al. (2021). Purification and characterization of a novel bacteriocin from Lactobacillus paracasei ZFM54. LWT, (143), 111125. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.111125. EDN: https://elibrary.ru/CGGALN
Fadare, O. S., et al. (2022). In vitro evaluation of the synbiotic effect of probiotic Lactobacillus strains and garlic extract against Salmonella species. LWT, (153), 112439. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.112439. EDN: https://elibrary.ru/UHGKIR
Nalle, R. P. I., et al. (2021). Effect of sanitizers and Lactobacillus rhamnosus R23 on the growth of Salmonella spp. in raw chicken fillets during temperature abuse storage. Food Research, (5), 250–258. https://doi.org/10.26656/fr.2017.5(5).029. EDN: https://elibrary.ru/WBSETE
Evangelista, A. G., et al. (2023). Bioprotective potential of lactic acid bacteria for Salmonella in vitro. Veterinary Research Communications, (47), 1357–1368. https://doi.org/10.1007/s11259-023-10083-4. EDN: https://elibrary.ru/BKTUVH
Twomey, et al. (2021). Recipe for success: Suggestions and recommendations for the isolation and characterisation of bacteriocins. International Journal of Microbiology, (19), 9990635. https://doi.org/10.1155/2021/9990635
Михайлов, В. В., Андрюков, Б. Г., & Ляпун, И. Н. (2019). Поиск и отбор бактериоцин продуцирующих штаммов морских бактерий из экосистем акваторий Японского моря. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология, 37(4), 173–177. https://doi.org/10.17116/molgen201937041173. EDN: https://elibrary.ru/ZEVASC
Похиленко, В. Д., et al. (2022). Выделение и характеристика бактериоцина штамма Bacillus subtilis, изолированного из пассифлоры. Бактериология, 7(1), 9–17. https://doi.org/10.20953/2500-1027-2022-1-9-17. EDN: https://elibrary.ru/WJHTEO
Garmasheva, I. L., & Oleschenko, L. T. (2023). Screening of bacteriocin producing dairy Enterococcus strains using low cost culture media. Frontiers in Microbiology, 14. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1168835. EDN: https://elibrary.ru/EHVVCT
Furlaneto Maia, L., et al. (2020). Antimicrobial activity of enterocins against Listeria sp. and other food spoilage bacteria. Biotechnology, (2), 797–806. https://doi.org/10.1007/s10529-020-02810-7. EDN: https://elibrary.ru/CVOFEX
Darbandi, A., et al. (2022). Bacteriocins: properties and potential use as antimicrobials. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 36, e24093. https://doi.org/10.1002/jcla.24093. EDN: https://elibrary.ru/WVQQDT
Bússolo, T. B., et al. (2022). Soybean flour as a substrate to obtain Enterococcus durans bacteriocins. Ciência e Agrotecnologia, 46, e008022. https://doi.org/10.1590/1413-7054202246008022. EDN: https://elibrary.ru/FTQBOU
Ogundare, O. C., et al. (2021). Biopreservative application of bacteriocins obtained from samples Ictalurus punctatus and fermented Zea mays African. African Journal of Microbiology Research, 15(8), 408–419. https://doi.org/10.5897/AJMR2017.8443. EDN: https://elibrary.ru/FSIGCX
Parlindungan, E., Dekiwadia, C., & Jones, O. A. (2021). Factors that influence growth and bacteriocin production in Lactiplantibacillus plantarum B21. Process Biochemistry, 107, 18–26. https://doi.org/10.1016/j.procbio.2021.05.009. EDN: https://elibrary.ru/XOJESY
Mercado, V., & Olmos, J. (2022). Bacteriocin production by Bacillus species: isolation, characterization, and application. Probiotics & Antimicrobial Proteins, 14, 1151–1169. https://doi.org/10.1007/s12602-022-09966-w. EDN: https://elibrary.ru/WTDSGD
Saidumohamed, B. E., et al. (2021). A magainin 2 like bacteriocin BpSl14 with anticancer action from gut Bacillus safensis SDG14. Analytical Biochemistry, 627(15), 1–9. https://doi.org/10.1016/j.ab.2021.114261. EDN: https://elibrary.ru/LKMZVZ
Xiang, Y. Z., et al. (2021). Purification and antibacterial properties of a novel bacteriocin against Escherichia coli from Bacillus subtilis isolated from blueberry ferments. LWT, 146, 111456. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.111456. EDN: https://elibrary.ru/KVAKSF
Sugita, H., et al. (1998). Production of the antibacterial substance by Bacillus sp. strain NM 12, an intestinal bacterium of Japanese coastal fish. Aquaculture, 165(3–4), 269–280. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(98)00267-1. EDN: https://elibrary.ru/ABQOHB
Carraturo, A., et al. (2006). Inhibition of Vibrio parahaemolyticus by a bacteriocin like inhibitory substance (BLIS) produced by Vibrio mediterranei 1. Journal of Applied Microbiology, 101(1), 234–241. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2006.02909.x. EDN: https://elibrary.ru/PWISGP
Shao, Y., et al. (2021). Isolation and purification of a new Bacillus subtilis strain from deer dung with anti microbial and anti cancer activities. Current Medical Science, 41(4), 832–849. https://doi.org/10.1007/s11596-021-2383-5. EDN: https://elibrary.ru/IJBFJK
Rani, P., Singh, B., & Tiwari, S. K. (2025). Bacteriocin production by Lactiplantibacillus plantarum LD1 in solid state fermentation using lignocellulosic substrates. Fermentation, 11(4), 233. https://doi.org/10.3390/fermentation11040233. EDN: https://elibrary.ru/AAKPJG
Dai, J., et al. (2022). Isolation and identification of new source of bacteriocin producing Lactobacillus plantarum C010 and growth kinetics of its batch fermentation. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 38(67). https://doi.org/10.1007/s11274-022-03244-1. EDN: https://elibrary.ru/WSFSSJ
Meskhi, B., et al. (2025). Early maturity wheat as a highly valuable feed raw material with prebiotic activity. Agriculture, 15(3), 1–20. https://doi.org/10.20944/preprints202501.1102.v1. EDN: https://elibrary.ru/XZYBFK
Costa Trigo, I., et al. (2021). Enhancing the saccharification of pretreated chestnut burrs to produce bacteriocins. Journal of Biotechnology, (329), 13–20. https://doi.org/10.1016/j.jbiotec.2021.01.010. EDN: https://elibrary.ru/GWXNCS
Lamas, A., et al. (2021). An overview of Salmonella biofilms and the use of bacteriocins and bacteriophages as new control alternatives. В: Salmonella spp.: A Global Challenge. https://doi.org/10.5772/intechopen.98208
Агроинвестор. (2025). Сальмонеллёз промышленного масштаба. Какие риски несёт бактерия Salmonella для животноводческих предприятий и потребителей. Получено с: https://www.agroinvestor.ru/technologies/article/32350-salmonellez/ (дата обращения: 20.06.2025)
Патент № 2 772 351 C1 Российская Федерация, МПК C12N 1/20, A61K 35/74. Способ выявления из естественных сред перспективных пробиотических штаммов : № 2021127457 : заявл. 18.09.2021 : опубл. 19.05.2022 / А. Б. Брень, М. С. Мазанко, Е. В. Празднова [и др.] ; заявитель: федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Донской государственный технический университет». EDN: https://elibrary.ru/UQZSYO
References
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). Official website. Retrieved from: https://www.fao.org/home/ru
Federal State Statistics Service. Official website. Retrieved from: https://rosstat.gov.ru/?ref=genderguides.ru
Petrova, Yu. V., Lyubomirova, V. N., & Liberman, A. A. (2020). Characterization of fish chemical composition. Journal of Applied Microbiology, 129(1), 116–136. https://doi.org/10.1111/jam.14628. EDN: https://elibrary.ru/WIZXQM
Robertson, P. A. W., O’Dowd, C., Burrells, C., Williams, P., & Austin, B. (2000). Use of Carnobacterium sp. as a probiotic for Atlantic salmon (Salmo salar L.) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum). Aquaculture, 185(3–4), 235–243. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00349-X. EDN: https://elibrary.ru/AFGRAB
Loo, K. Y., et al. (2020). Incidence of antibiotic resistance in Vibrio spp. Reviews in Aquaculture, 12(4), 2590–2608. https://doi.org/10.1111/raq.12460. EDN: https://elibrary.ru/CSMTBP
Simons, A., Alhanout, K., & Duval, R. E. (2020). Bacteriocins, antimicrobial peptides from bacteria origin: Overview of their biology and their implementation against multidrug resistant bacteria. Microorganisms, 8(5), 639. https://doi.org/10.3390/microorganisms8050639. EDN: https://elibrary.ru/JEJKWS
Chervotkina, D. R., & Borisova, A. V. (2022). Antimicrobial preparations of natural origin: Overview of properties and prospects for application. Proceedings of Universities. Applied Chemistry and Biotechnology, 12(2), 254–267. https://doi.org/10.21285/2227-2925-2022-12-2-254-267. EDN: https://elibrary.ru/EKZZBE
Chizhaeva, A. V., et al. (2021). Advantages of using probiotics based on lactic acid bacteria in aquaculture. International Journal of Applied and Fundamental Research, (9), 12–16. Retrieved from: https://applied-research.ru/ru/article/view?id=13265. EDN: https://elibrary.ru/YRWNEC
Bostvironnua, K., & Shleifer, D. (2020). Probiotics work even in the presence of antibiotics. Compound Feeds, (1), 109–112. Retrieved from: https://kombi-korma.ru/sites/default/files/2/01_20/2020_01_109-112.pdf. EDN: https://elibrary.ru/CCQTUE
Nayak, A., et al. (2022). Potential application of bacteriocins for sustainable aquaculture. Reviews in Aquaculture, (14), 1234–1248. https://doi.org/10.1111/raq.12647. EDN: https://elibrary.ru/XSLLWO
Wei, Z., et al. (2021). A novel subtilin like lantibiotics subtilin JS 4 produced by Bacillus subtilis JS 4, and its antibacterial mechanism against Listeria monocytogenes. LWT, (142), 110993. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.110993. EDN: https://elibrary.ru/VQOPVO
Knipe, H., et al. (2021). Probiotics and competitive exclusion of pathogens in shrimp aquaculture. Reviews in Aquaculture, 13(1), 324–352. https://doi.org/10.1111/raq.12477. EDN: https://elibrary.ru/SHNWRU
Han, S. R. (2020). Bacillus subtilis inhibits viral hemorrhagic septicemia virus infection in olive flounder (Paralichthys olivaceus) intestinal epithelial cells. Viruses, 13(1), 28. https://doi.org/10.3390/v13010028. EDN: https://elibrary.ru/FDQRZZ
Ye, P. A., et al. (2021). Purification and characterization of a novel bacteriocin from Lactobacillus paracasei ZFM54. LWT, (143), 111125. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.111125. EDN: https://elibrary.ru/CGGALN
Fadare, O. S., et al. (2022). In vitro evaluation of the synbiotic effect of probiotic Lactobacillus strains and garlic extract against Salmonella species. LWT, (153), 112439. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.112439. EDN: https://elibrary.ru/UHGKIR
Nalle, R. P. I., et al. (2021). Effect of sanitizers and Lactobacillus rhamnosus R23 on the growth of Salmonella spp. in raw chicken fillets during temperature abuse storage. Food Research, (5), 250–258. https://doi.org/10.26656/fr.2017.5(5).029. EDN: https://elibrary.ru/WBSETE
Evangelista, A. G., et al. (2023). Bioprotective potential of lactic acid bacteria for Salmonella in vitro. Veterinary Research Communications, (47), 1357–1368. https://doi.org/10.1007/s11259-023-10083-4. EDN: https://elibrary.ru/BKTUVH
Twomey, et al. (2021). Recipe for success: Suggestions and recommendations for the isolation and characterisation of bacteriocins. International Journal of Microbiology, (19), 9990635. https://doi.org/10.1155/2021/9990635
Mikhailov, V. V., Andryukov, B. G., & Lyapun, I. N. (2019). Search and selection of bacteriocin producing strains of marine bacteria from ecosystems of the Sea of Japan. Molecular Genetics, Microbiology and Virology, 37(4), 173–177. https://doi.org/10.17116/molgen201937041173. EDN: https://elibrary.ru/ZEVASC
Pokhilenko, V. D., et al. (2022). Isolation and characterization of bacteriocin strain Bacillus subtilis, isolated from passionflower. Bacteriology, 7(1), 9–17. https://doi.org/10.20953/2500-1027-2022-1-9-17. EDN: https://elibrary.ru/WJHTEO
Garmasheva, I. L., & Oleschenko, L. T. (2023). Screening of bacteriocin producing dairy Enterococcus strains using low cost culture media. Frontiers in Microbiology, 14. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1168835. EDN: https://elibrary.ru/EHVVCT
Furlaneto Maia, L., et al. (2020). Antimicrobial activity of enterocins against Listeria sp. and other food spoilage bacteria. Biotechnology, (2), 797–806. https://doi.org/10.1007/s10529-020-02810-7. EDN: https://elibrary.ru/CVOFEX
Darbandi, A., et al. (2022). Bacteriocins: Properties and potential use as antimicrobials. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 36, e24093. https://doi.org/10.1002/jcla.24093. EDN: https://elibrary.ru/WVQQDT
Bússolo, T. B., et al. (2022). Soybean flour as a substrate to obtain Enterococcus durans bacteriocins. Ciência e Agrotecnologia, 46, e008022. https://doi.org/10.1590/1413-7054202246008022. EDN: https://elibrary.ru/FTQBOU
Ogundare, O. C., et al. (2021). Biopreservative application of bacteriocins obtained from samples Ictalurus punctatus and fermented Zea mays African. African Journal of Microbiology Research, 15(8), 408–419. https://doi.org/10.5897/AJMR2017.8443. EDN: https://elibrary.ru/FSIGCX
Parlindungan, E., Dekiwadia, C., & Jones, O. A. (2021). Factors that influence growth and bacteriocin production in Lactiplantibacillus plantarum B21. Process Biochemistry, 107, 18–26. https://doi.org/10.1016/j.procbio.2021.05.009. EDN: https://elibrary.ru/XOJESY
Mercado, V., & Olmos, J. (2022). Bacteriocin production by Bacillus species: Isolation, characterization, and application. Probiotics & Antimicrobial Proteins, 14, 1151–1169. https://doi.org/10.1007/s12602-022-09966-w. EDN: https://elibrary.ru/WTDSGD
Saidumohamed, B. E., et al. (2021). A magainin 2 like bacteriocin BpSl14 with anticancer action from gut Bacillus safensis SDG14. Analytical Biochemistry, 627(15), 1–9. https://doi.org/10.1016/j.ab.2021.114261. EDN: https://elibrary.ru/LKMZVZ
Xiang, Y. Z., et al. (2021). Purification and antibacterial properties of a novel bacteriocin against Escherichia coli from Bacillus subtilis isolated from blueberry ferments. LWT, 146, 111456. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.111456. EDN: https://elibrary.ru/KVAKSF
Sugita, H., et al. (1998). Production of the antibacterial substance by Bacillus sp. strain NM 12, an intestinal bacterium of Japanese coastal fish. Aquaculture, 165(3–4), 269–280. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(98)00267-1. EDN: https://elibrary.ru/ABQOHB
Carraturo, A., et al. (2006). Inhibition of Vibrio parahaemolyticus by a bacteriocin like inhibitory substance (BLIS) produced by Vibrio mediterranei 1. Journal of Applied Microbiology, 101(1), 234–241. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2006.02909.x. EDN: https://elibrary.ru/PWISGP
Shao, Y., et al. (2021). Isolation and purification of a new Bacillus subtilis strain from deer dung with antimicrobial and anticancer activities. Current Medical Science, 41(4), 832–849. https://doi.org/10.1007/s11596-021-2383-5. EDN: https://elibrary.ru/IJBFJK
Rani, P., Singh, B., & Tiwari, S. K. (2025). Bacteriocin production by Lactiplantibacillus plantarum LD1 in solid state fermentation using lignocellulosic substrates. Fermentation, 11(4), 233. https://doi.org/10.3390/fermentation11040233. EDN: https://elibrary.ru/AAKPJG
Dai, J., et al. (2022). Isolation and identification of new source of bacteriocin producing Lactobacillus plantarum C010 and growth kinetics of its batch fermentation. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 38(67). https://doi.org/10.1007/s11274-022-03244-1. EDN: https://elibrary.ru/WSFSSJ
Meskhi, B., et al. (2025). Early maturity wheat as a highly valuable feed raw material with prebiotic activity. Agriculture, 15(3), 1–20. https://doi.org/10.20944/preprints202501.1102.v1. EDN: https://elibrary.ru/XZYBFK
Costa Trigo, I., et al. (2021). Enhancing the saccharification of pretreated chestnut burrs to produce bacteriocins. Journal of Biotechnology, (329), 13–20. https://doi.org/10.1016/j.jbiotec.2021.01.010. EDN: https://elibrary.ru/GWXNCS
Lamas, A., et al. (2021). An overview of Salmonella biofilms and the use of bacteriocins and bacteriophages as new control alternatives. In Salmonella spp.: A Global Challenge. https://doi.org/10.5772/intechopen.98208
Agroinvestor. (2025). Salmonellosis on an industrial scale: What risks does the Salmonella bacterium pose for livestock enterprises and consumers? Retrieved from: https://www.agroinvestor.ru/technologies/article/32350-salmonellez/ (Accessed: June 20, 2025)
Bren, A. B., Mazanko, M. S., Prazdnova, E. V., et al. (2022). Method for identifying promising probiotic strains from natural environments [Patent No. 2 772 351 C1 Russian Federation, IPC C12N 1/20, A61K 35/74]. Application No. 2021127457 (filed September 18, 2021); published May 19, 2022. Applicant: Don State Technical University (federal state budgetary educational institution of higher education). EDN: https://elibrary.ru/UQZSYO
Copyright (c) 2025 Tatiana S. Dmitrienko, Tatiana A. Maltseva, Victoria N. Shevchenko, Ekaterina N. Kosolapova, Dmitry V. Starostin

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.






















































