Изучение полифенольного состава листьев и коры Salix alba L. и Populus nigra L., произрастающих на юге России
Аннотация
Обоснование. Представители семейства Salicaceae и Populus nigra являются дикорастущими растениями, которые широко распространены в Волгоградской области и других регионах России. Эти растения также активно используются в системе агролесомелиорации по восстановлению и улучшению лесных и агролесных экосистем. Обеспечение эффективного подбора материала для лесопосадки и дальнейшего выращивания растений, позволяет изучать влияние условий произрастания, особенно в условиях aридности. Приспособительные биохимические механизмы, связанные с синтезом полифенолов, играют ключевую роль в обеспечении сопротивляемости растений к абиотическим факторам и биотическим воздействиям. Изучение полифенольного состава Salix alba L. и Populus nigra L., произрастающих в условиях засушливого региона Волгоградской области, позволит выявить связь между условиями среды обитания и уровнем содержания вторичных метаболитов.
Цель – идентифицировать и количественно оценить содержание полифенольных соединений и флавоноидов в экстракционных извлечениях, полученных из листьев и коры ивы белой (Salix alba) и тополя черного (Populus nigra), произрастающих на территории острова Сарпинский Волгоградской области.
Материалы и методы. Образцы растительного сырья были собраны в июне–июле 2025 года в Волгоградской области. Экстракты получали с применением 70% этанола при температуре 60°С. Полифенольные соединения определяли методом Фолина-Чокальтеу. Содержание флавоноидов определяли методом дифференциальной спектрофотометрии после реакции с алюминия хлоридом. Экстракты из листьев ивы анализировали, используя жидкостной хроматограф Shimadzu с диодно-матричным УФ-детектором.
Результаты. Определено суммарное содержание полифенольных соединений в экстрактах из листьев ивы (2,85±0,05%), коры ивы (1,76±0,04%), листьев тополя (1,75±0,04%) и коры тополя (3,26±0,06%). Определено содержание флавоноидов в экстрактах из листьев ивы (1,81±0,015%), коры ивы (0,28±0,005%), листьев тополя (±0,04%) и коры тополя (±0,06%). Методом тонкослойной хроматографии определены рутин в извлечении из листьев ивы и производные кверцетина в извлечении из листьев тополя. Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии в экстрактах из листьев ивы определены рутин и кверцетин.
Скачивания
Литература
Вагабова, Ф. А., Мамалиева, М. М., & Раджабов, Г. К. (2024). Оценка изменчивости содержания фенольных соединений в надземных органах природных образцов Silybum marianum (L.) Gaertn. Юг России: экология, развитие, 19(4), 154–163. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2024-4-13. EDN: https://elibrary.ru/FKIPJR
Косенко, А. А., Куркина, А. В., & Куркин, В. А. (2023). Методика количественного определения суммы флавоноидов в листьях тополя белого. Фармация, 7(7), 30–36. https://doi.org/10.29296/25419218-2023-07-04. EDN: https://elibrary.ru/XLRYYV
Корулькин, Д. Ю., Абилов, Ж. А., Музычкина, Р. А., & Толстиков, Г. А. (2007). Природные флавоноиды. Новосибирск: Академическое издательство: Гео, 232 p. (in Russian).
Крючков, С. Н., Солонкин, А. В., & Соломенцева, А. С. (2024). Селекционное семеноводство для защитного лесоразведения. Волгоград: Федеральный научный центр агроэкологии, комплексных мелиораций и защитного лесоразведения РАН, 364 p. ISBN: 978-5-605-19724-9. EDN: https://elibrary.ru/XFQNZG
Кулик, К. Н., Беляев, А. И., & Пугачева, А. М. (2023). Роль защитного лесоразведения в борьбе с засухой и опустыниванием агроландшафтов. Аридные экосистемы, 29(1), 4–14. https://doi.org/10.24412/1993-3916-2023-1-4-14. EDN: https://elibrary.ru/CSZXWA
Кулик, К. Н. (2009). Защитное лесоразведение в РФ: проблемы и стратегия развития до 2020 г. Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса, (1), 10–16. EDN: https://elibrary.ru/LLJNOL
Кузьмичева, Н. А. (2009). Влияние климатических факторов на содержание флавоноидов в листьях пойменных видов ив (Salix sp.). Вестник фармации, 4(46), 21–32. EDN: https://elibrary.ru/KZTWIF
Мальцева, Е. М., Егорова, Н. О., & Егорова, И. Н. (2011). Количественное определение суммарного содержания флавоноидов в траве кровохлебки лекарственной. Вестник Уральской медицинской академической науки, 3(35), 68–69. EDN: https://elibrary.ru/YSRWSJ
Поливанова, О. Б., & Чередниченко, М. Ю. (2023). Регуляция и метаболическая инженерия центрального фенилпропаноидного метаболического пути в ответ на воздействие стрессовых факторов у растений. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии, 26(5), 3–9. https://doi.org/10.29296/25877313-2023-05-01. EDN: https://elibrary.ru/LKLGTE
Страх, Я. Л., & Игнатовец, О. С. (2020). Изучение содержания фенольных соединений и флавоноидов различных популяций морошки приземистой Rubus chamaemorus L. Вестник фонда фундаментальных исследований, 4(94), 69–78. EDN: https://elibrary.ru/ORENNL
Федураев, П. В., Скрыпник, Л. Н., & Масленников, П. В. (2017). Особенности накопления фенольных соединений в растениях некоторых видов рода Rumex L. Химия растительного сырья, (3), 123–130. https://doi.org/10.14258/jcprm.201703755. EDN: https://elibrary.ru/ZFLNYL
Фролова, О. О., Компанцева, Е. В., & Дементьева, Т. М. (2016). Биологически активные вещества растений рода ива (Salix L.). Фармация и фармакология, 4(2), 41–59. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2016-4-2(15)-41-59. EDN: https://elibrary.ru/WCNPDJ
Berreghıoua, A., & Zıane, L. (2024). Ephedra alenda from the Algerian Sahara: Ethnobotanical Investigation, Evaluation of Total Polyphenols, Antioxidant Potential and Antibacterial Properties. Indian Journal of Agricultural Research, 59(3). https://doi.org/10.18805/IJARe.AF-884. EDN: https://elibrary.ru/RMQTJJ
Christie, P. J., Alfenito, M. R., & Walbot, V. (1994). Impact of low-temperature stress on general phenylpropanoid and anthocyanin pathways: Enhancement of transcript abundance and anthocyanin pigmentation in maize seedlings. Planta, 194(4), 541–549. https://doi.org/10.1007/bf00714468. EDN: https://elibrary.ru/BITSAD
Fraser, C. M., & Chapple, C. (1999). The phenylpropanoid pathway in Arabidopsis. The Arabidopsis Book, 9, e0152.
Golubkina, N., Plotnikova, U., Amagova, Z., & Sheshnitsan, S. S. (2023). Peculiarities of willow (Salix alba) bark mineral composition. Trace Elements in Medicine (Moscow), 24(1), 47–52. https://doi.org/10.19112/2413-6174-2023-24-1-47-52. EDN: https://elibrary.ru/QZZDLN
Lahrizi, L., Errachidi, F., & Ghadraoui, L. El. (2024). Impact of geographical conditions on phenolic and flavonoid contents and antioxidant activity of different extracts of ajuga iva. Indian Journal of Agricultural Research. https://doi.org/10.18805/ijare.af-827. EDN: https://elibrary.ru/GBDLTU
Niinemets, Ü. (2015). Uncovering the hidden facets of drought stress: Secondary metabolites make the difference. Tree Physiology, 36(2), 129–132. https://doi.org/10.1093/treephys/tpv128. EDN: https://elibrary.ru/WUAAXT
Qin, Y., Li, Q., & An, Q. (2022). A phenylalanine ammonia lyase from Fritillaria unibracteata promotes drought tolerance by regulating lignin biosynthesis and SA signaling pathway. International Journal of Biological Macromolecules, 213, 574–588. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.05.161. EDN: https://elibrary.ru/HBQHJZ
Sannikova, E. G., Popova, O. I., Frolova, O. O., & Airapetova, A. U. (2016). Determination of flavonoids of willow triandra (Salix triandra L.) growing in the north Caucasus. Pharmacy & Pharmacology, 4(3(16)), 56–67. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2016-4-3-56-67. EDN: https://elibrary.ru/WGCCMF
Singleton, V. L., Orthofer, R., & Lamuela-Raventós, R. M. (1999). Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent. Methods in Enzymology, 299, 152–178. https://doi.org/10.1016/s0076-6879(99)99017-1
References
Vagabova, F. A., Mamalieva, M. M., & Radzhabov, G. K. (2024). Assessment of variability of phenolic compound content in aboveground organs of natural samples of Silybum marianum (L.) Gaertn. South of Russia: Ecology, Development, 19(4), 154–163. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2024-4-13. EDN: https://elibrary.ru/FKIPJR
Kosenko, A. A., Kurkina, A. V., & Kurkin, V. A. (2023). Method for quantitative determination of the total flavonoids in white poplar leaves. Pharmacy, 7(7), 30–36. https://doi.org/10.29296/25419218-2023-07-04. EDN: https://elibrary.ru/XLRYYV
Korulkin, D. Yu., Abilov, Zh. A., Muzychkina, R. A., & Tolstikov, G. A. (2007). Natural flavonoids. Novosibirsk: Academic Publishing House: Geo, 232 p. (in Russian).
Kryuchkov, S. N., Solonkin, A. V., & Solomentseva, A. S. (2024). Selective seed production for protective afforestation. Volgograd: Federal Scientific Center for Agroecology, Comprehensive Melioration and Protective Afforestation of the Russian Academy of Sciences, 364 p. ISBN: 978-5-605-19724-9. EDN: https://elibrary.ru/XFQNZG
Kulik, K. N., Belyaev, A. I., & Pugacheva, A. M. (2023). The role of protective afforestation in combating drought and desertification of agricultural landscapes. Arid Ecosystems, 29(1), 4–14. https://doi.org/10.24412/1993-3916-2023-1-4-14. EDN: https://elibrary.ru/CSZXWA
Kulik, K. N. (2009). Protective afforestation in the Russian Federation: Problems and development strategy until 2020. Theoretical and Applied Problems of the Agro-Industrial Complex, (1), 10–16. EDN: https://elibrary.ru/LLJNOL
Kuzmicheva, N. A. (2009). Influence of climatic factors on the flavonoid content in leaves of floodplain willow species (Salix sp.). Bulletin of Pharmacy, 4(46), 21–32. EDN: https://elibrary.ru/KZTWIF
Maltseva, E. M., Egorova, N. O., & Egorova, I. N. (2011). Quantitative determination of the total flavonoid content in the herb of Sanguisorba officinalis. Bulletin of the Ural Medical Academic Science, 3(35), 68–69. EDN: https://elibrary.ru/YSRWSJ
Polivanova, O. B., & Cherednichenko, M. Yu. (2023). Regulation and metabolic engineering of the central phenylpropanoid metabolic pathway in response to stress factors in plants. Issues of Biological, Medical and Pharmaceutical Chemistry, 26(5), 3–9. https://doi.org/10.29296/25877313-2023-05-01. EDN: https://elibrary.ru/LKLGTE
Strakh, Ya. L., & Ignatovets, O. S. (2020). Study of the content of phenolic compounds and flavonoids in various populations of cloudberry Rubus chamaemorus L. Bulletin of the Fund for Fundamental Research, 4(94), 69–78. EDN: https://elibrary.ru/ORENNL
Feduraev, P. V., Skrypnik, L. N., & Maslennikov, P. V. (2017). Characteristics of phenolic compound accumulation in plants of some species of the genus Rumex L. Chemistry of Plant Raw Material, (3), 123–130. https://doi.org/10.14258/jcprm.201703755. EDN: https://elibrary.ru/ZFLNYL
Frolova, O. O., Kompantseva, E. V., & Dementeva, T. M. (2016). Biologically active substances of plants of the willow genus (Salix L.). Pharmacy and Pharmacology, 4(2), 41–59. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2016-4-2(15)-41-59. EDN: https://elibrary.ru/WCNPDJ
Berreghıoua, A., & Zıane, L. (2024). Ephedra alenda from the Algerian Sahara: Ethnobotanical Investigation, Evaluation of Total Polyphenols, Antioxidant Potential and Antibacterial Properties. Indian Journal of Agricultural Research, 59(3). https://doi.org/10.18805/IJARe.AF-884. EDN: https://elibrary.ru/RMQTJJ
Christie, P. J., Alfenito, M. R., & Walbot, V. (1994). Impact of low-temperature stress on general phenylpropanoid and anthocyanin pathways: Enhancement of transcript abundance and anthocyanin pigmentation in maize seedlings. Planta, 194(4), 541–549. https://doi.org/10.1007/bf00714468. EDN: https://elibrary.ru/BITSAD
Fraser, C. M., & Chapple, C. (1999). The phenylpropanoid pathway in Arabidopsis. The Arabidopsis Book, 9, e0152.
Golubkina, N., Plotnikova, U., Amagova, Z., & Sheshnitsan, S. S. (2023). Peculiarities of willow (Salix alba) bark mineral composition. Trace Elements in Medicine (Moscow), 24(1), 47–52. https://doi.org/10.19112/2413-6174-2023-24-1-47-52. EDN: https://elibrary.ru/QZZDLN
Lahrizi, L., Errachidi, F., & Ghadraoui, L. El. (2024). Impact of geographical conditions on phenolic and flavonoid contents and antioxidant activity of different extracts of ajuga iva. Indian Journal of Agricultural Research. https://doi.org/10.18805/ijare.af-827. EDN: https://elibrary.ru/GBDLTU
Niinemets, Ü. (2015). Uncovering the hidden facets of drought stress: Secondary metabolites make the difference. Tree Physiology, 36(2), 129–132. https://doi.org/10.1093/treephys/tpv128. EDN: https://elibrary.ru/WUAAXT
Qin, Y., Li, Q., & An, Q. (2022). A phenylalanine ammonia lyase from Fritillaria unibracteata promotes drought tolerance by regulating lignin biosynthesis and SA signaling pathway. International Journal of Biological Macromolecules, 213, 574–588. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.05.161. EDN: https://elibrary.ru/HBQHJZ
Sannikova, E. G., Popova, O. I., Frolova, O. O., & Airapetova, A. U. (2016). Determination of flavonoids of willow triandra (Salix triandra L.) growing in the north Caucasus. Pharmacy & Pharmacology, 4(3(16)), 56–67. https://doi.org/10.19163/2307-9266-2016-4-3-56-67. EDN: https://elibrary.ru/WGCCMF
Singleton, V. L., Orthofer, R., & Lamuela-Raventós, R. M. (1999). Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folin-ciocalteu reagent. Methods in Enzymology, 299, 152–178. https://doi.org/10.1016/s0076-6879(99)99017-1
Copyright (c) 2026 Anna F. Ryabukha, Irina V. Pletneva, Alexander N. Geisman, Mikhail M. Korneev
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
