ВЛИЯНИЕ ДЕКСТРАНАЛЯ НА БАКТЕРИОБИОМ КИШЕЧНИКА ТЕЛЯТ
Аннотация
Обоснование. Поиск эффективных про- и пребиотиков для улучшения здоровья телят, в частности, снижения кишечных инфекций и повышения продукционных показателей, очень актуален. Влияние пребиотиков изучено мало, особенно в плане биоразнообразия кишечного микробиома.
Целью нашей работы было изучение влияния декстраналя на рост телят и бактериобиом содержимого их прямой кишки.
Материалы и методы. Состав и структуру бактериобиома определяли у телят контрольной группы (К, стандартная диета) и группы, получавшей декстраналь (Д) в возрасте 18-20 дней метбаркодингом по гену 16S рРНК (V3-V4, Illumina MiSeq).
Результаты. Всего выявлено 377 операциональных таксономических единиц (ОТЕ) бактерий, относящихся к 168 родам, 91 семейству, 55 порядкам, 30 классам и 11 типам; более половины числа выявленных в работе ОТЕ относились к типу Firmicutes, за которым шли типы Bacteroidetes и Actinobacteria. По относительному обилию нуклеотидных последовательностей порядок доминирования был такой же. Применение декстраналя на 11,9 кг (15%) повысило массу тела двухмесячных телят в группе Д по сравнению с К: следовательно, выявленные различия в составе и структуре кишечного бактериобиома под влиянием декстраналя можно считать благоприятными. В первую очередь это относится к условному патогену Escherichia/Shigella (Gammaproteobacteria), снизившему свое присутствие. Всего различное относительное обилие в группах выявлено по 73 ОТЕ, в т.ч. по шести доминантным. Изменение обилия некоторых ОТЕ, однако, оказалось трудно интерпретировать: вероятнее всего, из-за недостаточного разрешения видов/штаммов по фрагменту гена 16S рРНК. По индексам α-биоразнообразия различия между группами не выявлено, хотя общее направление изменения этих индексов указывает на повышение биоразнообразия бактериобиома кишечника после применения декстраналя.
Заключение. Эта работа является одной из первых попыток каталогизации кишечного бактериобиома представителей крупного рогатого скота в регионе, и полученные результаты являются основой для более детального и таксономически адресного планирования дальнейших исследований.
Скачивания
Литература
Список литературы
Декстраналь-40 – перспективное биологически активное сырье для пищевой, фармацевтической и косметической промышленности / Глазев Д.Ю., Беляев В.Н., Фролов А.В., Никифорова Е.Д. // Материалы IX Всероссийской конференции «Технологии и оборудование пищевой, биотехнологической и пищевой промышленности». Бийск, 2016. С. 253-256.
Применение препарата Декстраналь в ветеринарии: методические рекомендации / Коптев В.Ю., Шкиль Н.А., Леонова М.А., Онищенко И.С., Балыбина Н.Ю., Афонюшкин В.Н., Давыдова Н.В., Сырат М.В., Пенькова И.Н. // Новосибирск: СНФЦА РАН, 2020. С. 21.
Генетическое разнообразие бактерий кишечника крупного рогатого скота, выявленное с помощью высокопроизводительного секвенирования / Сухинин А.А., Краснопеев А.Ю., Горшкова А.С., Белых О.И., Липко И., Потапов С.А., Тихонова И.В., Батомункуев А.С., Логинов С.Н. // Международный вестник ветеринарии. 2022. № 3. С.27-36. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.3.27
The composition of the perinatal intestinal microbiota in cattle / Alipour M.J., Jalanka J., Pessa-Morikawa T., Kokkonen T., Satokari R., Hynönen U., Iivanainen A., Niku M. // Sci. Rep. 2018. Vol. 8. No. 1. Art.10437. https://doi.org/10.1038/s41598-018-28733-y
Gut microbiome colonization and development in neonatal rumi-nants: Strategies, prospects, and opportunities / Arshad M.A., Hassan F.U., Rehman M.S., Huws S.A., Cheng Y., Din A.U. // Anim Nutr. 2021. Vol. 7. No. 3. P. 883-895. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2021.03.004
Fecal microbiota dynamics and its relationship to diarrhea and health in dairy calves / Chen H., Liu Y., Huang K., Yang B., Zhang Y., Yu Z., Wang J. // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2022. Vol. 13. No. 1. P.132. https://doi.org/10.1186/s40104-022-00758-4
Effects of Flavonoid-Rich Orange Juice Intervention on Major Depressive Disorder in Young Adults: A Randomized Controlled Trial // Choi J., Kim J.H., Park M., Lee H.J. Nutrients. 2022. Vol. 15. No. 1. P. 145. https://doi.org/10.3390/nu15010145
Comparative study of different liquid diets for dairy calves and the impact on performance and the bacterial community during diarrhea / Coelho M.G., Virgínio Júnior G.F., Tomaluski C.R., de Toledo A.F., Reis M.E., Dondé S.C., Mendes L.W., Coutinho L.L., Bittar C.M.M. // Sci. Rep. 2022. Vol. 12. No. 1. P. 13394. https://doi.org/10.1038/s41598-022-17613-1
The role of the mucin-glycan foraging Ruminococcus gnavus in the communication between the gut and the brain / Coletto E., Latousakis D., Pontifex M.G., Crost E.H., Vaux L., Perez Santamarina E., Goldson A., Brion A., Hajihosseini M.K., Vauzour D., Savva G.M., Juge N. // Gut Microbes. 2022. Vol. 14. No. 1. P.2073784. https://doi.org/10.1080/19490976.2022.2073784
Colonization and development of the gut microbiome in calves / Du Y., Gao Y, Hu M., Hou J., Yang L., Wang X., Du W., Liu J., Xu Q. J. // Anim. Sci. Biotechnol. 2023. Vol. 14. No. 1. P. 46. https://doi.org/10.1186/s40104-023-00856-x
Edgar R.C. Search and clustering orders of magnitude faster than BLAST // Bioinformatics. 2010. Vol. 26. No. 19. P. 2460-2461.
Edgar R.C. UPARSE: highly accurate OTU sequences from mi-crobial amplicon reads // Nat. Methods. 2013. Vol. 10. P. 996–998.
Edgar R.C. UNOISE2: Improved error-correction for Illumina 16S and ITS amplicon reads // bioRxiv. 2016а. https://doi.org/10.1101/081257
Edgar R. C. SINTAX, a Simple Non-Bayesian Taxonomy Classi-fier for 16S and ITS Sequences // bioRxiv. 2016b. https://doi.org/10.1101/074161
Development of colonic microflora as assessed by pyrosequencing in dairy calves fed waste milk / Edrington T.S., Dowd S.E., Farrow R.F., Hagevoort G.R., Callaway T.R., Anderson R.C., Nisbet D.J. // J. Dairy Sci. 2012. Vol. 95. No. 8. P. 4519-4525. https://doi.org/10.3168/jds.2011-5119
The Probiotic Butyricicoccus pullicaecorum Reduces Feed Con-version and Protects from Potentially Harmful Intestinal Microorganisms and Necrotic Enteritis in Broilers / Eeckhaut V., Wang J., Van Parys A., Haesebrouck F., Joossens M., Falony G., Raes J., Ducatelle R., Van Immerseel F. // Front. Microbiol. 2016. Vol. 7. P. 1416. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.01416
An improved dual-indexing approach for multiplexed 16S rRNA gene sequencing on the Illumina MiSeq platform / Fadrosh D.W., Ma B., Gajer P., Gajer P., Sengamalay, N., Ott, S., Brotman R.M. Ravel J. // Microbiome. 2014. Vol. 2. P. 6. https://doi.org/10.1186/2049-2618-2-6
Characterization of the Fecal Bacterial Microbiota of Healthy and Diarrheic Dairy Calves / Gomez D.E., Arroyo L.G., Costa M.C., Viel L., Weese J.S. // J. Vet. Intern. Med. 2017. Vol. 31. No. 3. P. 928-939. https://doi.org/10.1111/jvim.14695
Calf Diarrhea Is Associated With a Shift From Obligated to Facultative Anaerobes and Expansion of Lactate-Producing Bacteria / Gomez D.E., Li L., Goetz H., MacNicol J., Gamsjaeger L., Renaud D.L. // Front. Vet. Sci. 2022. Vol. 9. P. 846383. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.846383
Hammer O., Harper D.A.T., Ryan P.D.PAST: Paleontological Statistics Software Package for Education and Data Analysis // Palaeontologia Electronica. 2001. No. 4. P. 9.
Temporal Changes in Fecal Unabsorbed Carbohydrates Relative to Perturbations in Gut Microbiome of Neonatal Calves: Emerging of Diarrhea Induced by Extended-Spectrum β-lactamase-Producing Enteroaggregative Escherichia coli / He Z., Ma Y., Chen X., Yang S., Zhang S., Liu S., Xiao J., Wang Y., Wang W., Yang H., Li S., Cao Z. // Front. Microbiol. 2022. Vol. 13. P. 883090. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.883090
Effect of milk replacer allowance on calf faecal bacterial commu-nity profiles and fermentation / Kumar S., Khan M.A., Beijer E., Liu J., Lowe K.K., Young W., Mills D.A., Moon C.D. // Anim. Microbiome. 2021. Vol. 3. No. 1. P. 27. https://doi.org/10.1186/s42523-021-00088-2
Comparison of changes in fecal microbiota of calves with and without dam / Li M., Wang Z., Wang L., Xue B., Hu R., Zou H., Liu S., Shah A.M., Peng Q. // PeerJ. 2022. Vol. 10. P.e12826. https://doi.org/10.7717/peerj.12826
Blautia ‒ a new functional genus with potential probiotic proper-ties? / Liu X., Mao B., Gu J., Wu J., Cui S., Wang G., Zhao J., Zhang H., Chen W. // Gut Microbes. 2021. Vol. 13. No. 1. P. 1-21. https://doi.org/10.1080/19490976.2021.1875796
Liu H.W., Zhou D.W., Li K. Effects of chestnut tannins on per-formance and antioxidative status of transition dairy cows. // J. Dairy Sci. 2013. Vol. 96. No. 9. P. 5901-5907. https://doi.org/10.3168/jds.2013-6904
Beta-Glucan Alters Gut Microbiota and Plasma Metabolites in Pre-Weaning Dairy Calves / Luo Z., Ma L., Zhou T., Huang Y., Zhang L., Du Z., Yong K., Yao X., Shen L., Yu S., Shi X., Cao S. // Metabolites. 2022. Vol. 12. No. 8. P. 687. https://doi.org/10.3390/metabo12080687
Altered mucosa-associated microbiota in the ileum and colon of neonatal calves in response to delayed first colostrum feeding / Ma T., O'Hara E., Song Y., Fischer A.J., He Z., Steele M.A., Guan L.L. // J. Dairy Sci. 2019. Vol. 102. No. 8. P. 7073-7086. https://doi.org/10.3168/jds.2018-16130
Malmuthuge N., Guan L.L. Understanding the gut microbiome of dairy calves: Opportunities to improve early-life gut health // J. Dairy Sci. 2017. Vol. 100. No. 7. P. 5996-6005. https://doi.org/10.3168/jds.2016-12239
Moxley R.A., Francis D.H. Natural and experimental infection with an attaching and effacing strain of Escherichia coli in calves // Infect. Immun. 1986. Vol. 53. P. 339-346.
A Neurotoxic Insecticide Promotes Fungal Infection in Aedes ae-gypti Larvae by Altering the Bacterial Community / Noskov Y.A., Kabilov M.R., Polenogova O.V., Yurchenko Y.A., Belevich O.E., Yaroslavtseva O.N., Alikina T.Y., Byvaltsev A.M., Rotskaya U.N., Morozova V.V., Glupov V.V., Kryukov V.Y. // Microb Ecol. 2021. Vol. 81. P. 493–505. https://doi.org/10.1007/s00248-020-01567-w
Gut microbiota features associated with Clostridioides difficile colonization in dairy calves / Redding L.E., Berry A.S., Indugu N., Huang E., Beiting D.P., Pitta D. // PLoS One. 2021. Vol. 16. No. 12. P. e0251999. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0251999
Pueraria lobata polysaccharides alleviate neonatal calf diarrhea by modulating gut microbiota and metabolites / Shen L., Shen Y., You L., Zhang Y., Su Z., Peng G., Deng J., Zuo Z., Zhong Z., Ren Z., Yu S., Zong X., Zhu Y., Cao S. // Front. Vet. Sci. 2023. Vol. 9. P. 1024392. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1024392
Fecal microbiome profiles of neonatal dairy calves with varying severities of gastrointestinal disease / Slanzon G.S., Ridenhour B.J., Moore D.A., Sischo W.M., Parrish L.M., Trombetta S.C., McConnel C.S. // PLoS One. 2022. Vol. 17. No. 1. P. e0262317. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0262317
Swennen K., Courtin C.M., Delcour J.A. Non-digestible oligosaccharides with prebiotic properties // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2006. Vol. 46. P. 459-471.
Host-specific probiotics feeding influence growth, gut microbiota, and fecal biomarkers in buffalo calves / Varada V.V, .Kumar S., Chhotaray S., Tyagi A.K. // AMB Express. 2022. Vol. 12. No. 1. P. 118. https://doi.org/10.1186/s13568-022-01460-4
Does algae β-glucan affect the fecal bacteriome in dairy calves? / Virginio Junior G.F., Reis M.E., da Silva A.P., de Toledo A.F., Cezar A.M., Mendes L.W., Greco L., Montenegro H., Coutinho L.L., Bittar C.M.M. // PLoS One. 2021. Vol. 16. No. 9. P. e0258069. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0258069
Effects of Milk Replacer-Based Lactobacillus on Growth and Gut Development of Yaks' Calves: a Gut Microbiome and Metabolic Study / Wang Y., An M., Zhang Z., Zhang W., Kulyar M.F., Iqbal M., He Y., Li F., An T., Li H., Luo X., Yang S., Li J. // Microbiol Spectr. 2022. Vol. 10. No. 4. P. e0115522. https://doi.org/10.1128/spectrum.01155-22
Naïve Bayesian Classifier for Rapid Assignment of rRNA Se-quences into the New Bacterial Taxonomy / Wang Q., Garrity G.M., Tiedje J.M., Cole J.R. // Appl. Environ. Microbiol. 2007. Vol. 73. P. 5261–5267. https://doi.org/10.1128/AEM.00062-07
Supplementation of Probiotic Butyricicoccus pullicaecorum Mediates Anticancer Effect on Bladder Urothelial Cells by Regulating Butyrate-Responsive Molecular Signatures / Wang Y.C., Ku W.C., Liu C.Y., Cheng Y.C., Chien C.C., Chang K.W., Huang C.J. // Diagnostics. 2021. Vol. 11. No. 12. P. 2270. https://doi.org/10.3390/diagnostics11122270
Supplementation with beta-1,3-glucan improves productivity, im-munity and antioxidative status in transition Holstein cows / Xia W.H., Wang L., Niu X.D., Wang J.H., Wang Y.M., Li Q.L., Wang Z.Y. // Res. Vet. Sci. 2020. Vol. 134. P. 120-126. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2020.12.009
Integrated 16S rDNA Gene Sequencing and Untargeted Metabo-lomics Analyses to Investigate the Gut Microbial Composition and Plasma Metabolic Phenotype in Calves With Dampness-Heat Diarrhea / Yan Z., Zhang K., Zhang K., Wang G., Wang L., Zhang J., Qiu Z., Guo Z., Song X., Li J. // Front. Vet. Sci. 2022. Vol. 9. P. 703051. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.703051
References
Glazev D.Yu., Belyaev V.N., Frolov A.V., Nikiforova E.D. Materialy 9 Vserossiiskoi konferentsii molodykh uchenykh “Tekhnologii I oborudovanie pishevoi, farmatsevticheskoi i kosmeticheskoi promyshlennosti” [Materials of the IX Russian conf. of young scientists “Technologies and equipment for food, farmaceutical and cosmetic industry”]. Biisk, 2016, pp. 253-256.
Koptev B.Y., Shkil N.A., Leonova M.A., Oishenko I.S., Balybina N.Y., Afonyushkin V.N., Davydova N.V., Syrat M.V., Penkova I.N. Primenenie preparata Dekstranal v veterinarii: metodicheskie recomendatsii [The use of Dextranal preparation in veterinary: methodical recommendations]. Novosibirsk: SNFCA, 2020, p. 21.
Suhinin A.A., Krasnopeev A. YU., Gorshkova A.S., Belykh O.I., Lipko I., Potapov S.A., Tikhonova I.V., Batomunkuev A.S., Loginov S.N. Genetic diversity of cattle intestinal bacteria detected by high-output sequencing. Mezhdunarodny Vestnik Veterinarii [International Veterinary Gazette], 2022, no. 3, pp. 27-36. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2022.3.27
Alipour M.J., Jalanka J., Pessa-Morikawa T., Kokkonen T., Satokari R., Hynönen U., Iivanainen A., Niku M. Sci. Rep., 2018, no. 8(1), p. 10437. https://doi.org/10.1038/s41598-018-28733-y
Arshad M.A., Hassan F.U., Rehman M.S., Huws S.A., Cheng Y., Din A.U. Anim Nutr., 2021, no. 7(3), pp. 883-895. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2021.03.004
Chen H., Liu Y., Huang K., Yang B., Zhang Y., Yu Z., Wang J. J. Anim. Sci. Biotechnol., 2022, no. 13(1), p. 132. https://doi.org/10.1186/s40104-022-00758-4
Choi J., Kim J.H., Park M., Lee H.J. Nutrients. 2022, no. 15(1), p. 145. https://doi.org/10.3390/nu15010145
Coelho M.G., Virgínio Júnior G.F., Tomaluski C.R., de Toledo A.F., Reis M.E., Dondé S.C., Mendes L.W., Coutinho L.L., Bittar C.M.M. Sci. Rep., 2022, no. 12(1), p. 13394. https://doi.org/10.1038/s41598-022-17613-1
Coletto E., Latousakis D., Pontifex M.G., Crost E.H., Vaux L., Perez Santamarina E., Goldson A., Brion A., Hajihosseini M.K., Vauzour D., Savva G.M., Juge N. Gut Microbes., 2022, no. 14(1), p. 2073784. https://doi.org/10.1080/19490976.2022.2073784
Du Y., Gao Y, Hu M., Hou J., Yang L., Wang X., Du W., Liu J., Xu Q. J. Anim. Sci. Biotechnol., 2023, no. 14(1), p. 46. https://doi.org/10.1186/s40104-023-00856-x
Edgar R.C. Bioinformatics, 2010, no. 26(19), pp. 2460-2461.
Edgar R.C. Nat. Methods., 2013, no. 10, pp. 996–998.
Edgar R.C. bioRxiv, 2016а. https://doi.org/10.1101/081257
Edgar R. C. bioRxiv, 2016b. https://doi.org/10.1101/074161
Edrington T.S., Dowd S.E., Farrow R.F., Hagevoort G.R., Calla-way T.R., Anderson R.C., Nisbet D.J. J. Dairy Sci., 2012, no. 95(8), pp. 4519-25. https://doi.org/10.3168/jds.2011-5119
Eeckhaut V., Wang J., Van Parys A., Haesebrouck F., Joossens M., Falony G., Raes J., Ducatelle R., Van Immerseel F. Front. Microbiol., 2016, no. 7, pp. 1416. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.01416
Fadrosh D.W., Ma B., Gajer P., Gajer P., Sengamalay, N., Ott, S., Brotman R.M. Ravel J. Microbiome., 2014, no. 2, pp. 6. https://doi.org/10.1186/2049-2618-2-6
Gomez D.E., Arroyo L.G., Costa M.C., Viel L., Weese J.S. J. Vet. Intern. Med., 2017, no. 31(3), pp. 928-939. https://doi.org/10.1111/jvim.14695
Gomez D.E., Li L., Goetz H., MacNicol J., Gamsjaeger L., Re-naud D.L. Front. Vet. Sci., 2022, no. 9, p. 846383. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.846383
Hammer O., Harper D.A.T., Ryan P.D. Palaeontologia Electronica, 2001, no. 4, p. 9.
He Z., Ma Y., Chen X., Yang S., Zhang S., Liu S., Xiao J., Wang Y., Wang W., Yang H., Li S., Cao Z. Front. Microbiol., 2022, no. 13, p. 883090. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.883090
Kumar S., Khan M.A., Beijer E., Liu J., Lowe K.K., Young W., Mills D.A., Moon C.D. Anim. Microbiome., 2021, no. 3(1), p. 27. https://doi.org/10.1186/s42523-021-00088-2
Li M., Wang Z., Wang L., Xue B., Hu R., Zou H., Liu S., Shah A.M., Peng Q. PeerJ., 2022, no. 10, p. e12826. https://doi.org/10.7717/peerj.12826
Liu X., Mao B., Gu J., Wu J., Cui S., Wang G., Zhao J., Zhang H., Chen W. Gut Microbes., 2021, no. 13(1), pp. 1-21. https://doi.org/10.1080/19490976.2021.1875796
Liu H.W., Zhou D.W., Li K. J. Dairy Sci., 2013, no. 96(9), pp. 5901-5907. https://doi.org/10.3168/jds.2013-6904
Luo Z., Ma L., Zhou T., Huang Y., Zhang L., Du Z., Yong K., Yao X., Shen L., Yu S., Shi X., Cao S. Metabolites, 2022, no. 12(8), p. 687. https://doi.org/10.3390/metabo12080687
Ma T., O'Hara E., Song Y., Fischer A.J., He Z., Steele M.A., Guan L.L. J. Dairy Sci., 2019, no. 102(8), pp. 7073-7086. https://doi.org/10.3168/jds.2018-16130
Malmuthuge N., Guan L.L. J. Dairy Sci., 2017, no. 100(7), pp. 5996-6005. https://doi.org/10.3168/jds.2016-12239
Moxley R.A., Francis D.H. Infect. Immun., 1986, no. 53, pp. 339-346
Noskov Y.A., Kabilov M.R., Polenogova O.V., Yurchenko Y.A., Belevich O.E., Yaroslavtseva O.N., Alikina T.Y., Byvaltsev A.M., Rotskaya U.N., Morozova V.V., Glupov V.V., Kryukov V.Y. Microb. Ecol., 2021, no. 81, pp.493–505. https://doi.org/10.1007/s00248-020-01567-w
Redding L.E., Berry A.S., Indugu N., Huang E., Beiting D.P., Pitta D. PLoS One, 2021, no. 16(12), p. e0251999. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0251999
Shen L., Shen Y., You L., Zhang Y., Su Z., Peng G., Deng J., Zuo Z., Zhong Z., Ren Z., Yu S., Zong X., Zhu Y., Cao S. Front. Vet. Sci., 2023, no. 9. p. 1024392. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1024392
Slanzon G.S., Ridenhour B.J., Moore D.A., Sischo W.M., Parrish L.M., Trombetta S.C., McConnel C.S. PLoS One, 2022, no. 17(1), p. e0262317. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0262317
Swennen K., Courtin C.M., Delcour J.A. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2006, no. 46, pp. 459-471.
Varada V.V, .Kumar S., Chhotaray S., Tyagi A.K. AMB Express, 2022, no. 12(1), p. 118. https://doi.org/10.1186/s13568-022-01460-4
Virginio Junior G.F., Reis M.E., da Silva A.P., de Toledo A.F., Cezar A.M., Mendes L.W., Greco L., Montenegro H., Coutinho L.L., Bittar C.M.M. PLoS One, 2021, no. 16(9), p. e0258069. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0258069
Wang Y., An M., Zhang Z., Zhang W., Kulyar M.F., Iqbal M., He Y., Li F., An T., Li H., Luo X., Yang S., Li J. Microbiol Spectr., 2022, no. 10(4), p. e0115522. https://doi.org/10.1128/spectrum.01155-22
Wang Q., Garrity G.M., Tiedje J.M., Cole J.R. Appl. Environ. Microbiol., 2007, vol. 73, pp. 5261–5267. https://doi.org/10.1128/AEM.00062-07
Wang Y.C., Ku W.C., Liu C.Y., Cheng Y.C., Chien C.C., Chang K.W., Huang C.J. Diagnostics, 2021, no. 11(12), p. 2270. https://doi.org/10.3390/diagnostics11122270
Xia W.H., Wang L., Niu X.D., Wang J.H., Wang Y.M., Li Q.L., Wang Z.Y. Res. Vet. Sci., 2020, no. 134, pp. 120-126. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2020.12.009
Yan Z., Zhang K., Zhang K., Wang G., Wang L., Zhang J., Qiu Z., Guo Z., Song X., Li J. Front. Vet. Sci., 2022, no. 9, p. 703051. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.703051
Просмотров аннотации: 97 Загрузок PDF: 26
Copyright (c) 2023 Natalia B. Naumova, Olga A. Baturina, Anna S. Lokteva, Valentina I. Pleshakova, Nadezhda A. Lescheva, Tatiana I. Lorengel, Natalia S. Zolotova, Irina G. Alekseeva, Marsel R. Kabilov
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
